Cảm ơn bạn đã ghé thăm Nature.com. Phiên bản trình duyệt bạn đang sử dụng có hỗ trợ CSS hạn chế. Để có kết quả tốt nhất, chúng tôi khuyên bạn nên sử dụng phiên bản trình duyệt mới hơn (hoặc tắt chế độ tương thích trong Internet Explorer). Trong thời gian chờ đợi, để đảm bảo được hỗ trợ liên tục, chúng tôi đang hiển thị trang web mà không có kiểu dáng hoặc JavaScript.
Cây lá trang trí với vẻ ngoài tươi tốt được đánh giá cao. Một cách để đạt được điều này là sử dụng các chất điều hòa sinh trưởng thực vật làm công cụ quản lý sinh trưởng thực vật. Nghiên cứu được thực hiện trên cây lùn Schefflera (một loại cây lá cảnh) được xử lý bằng cách phun axit gibberellic và hormone benzyladenine lên lá trong nhà kính được trang bị hệ thống tưới phun sương. Hormon này được phun lên lá cây lùn schefflera ở nồng độ 0, 100 và 200 mg/l trong ba giai đoạn cứ sau 15 ngày. Thí nghiệm được thực hiện theo phương pháp giai thừa theo kiểu hoàn toàn ngẫu nhiên với 4 lần lặp lại. Sự kết hợp giữa axit gibberellic và benzyladenine ở nồng độ 200 mg/l có ảnh hưởng rõ rệt đến số lượng lá, diện tích lá và chiều cao cây. Phương pháp xử lý này cũng mang lại hàm lượng sắc tố quang hợp cao nhất. Ngoài ra, tỷ lệ carbohydrate hòa tan và đường khử cao nhất được quan sát thấy ở các phương pháp xử lý 100 và 200 mg/L benzyladenine và 200 mg/L gibberellin + benzyladenine. Phân tích hồi quy từng bước cho thấy khối lượng gốc là biến đầu tiên được đưa vào mô hình, giải thích 44% biến thể. Biến tiếp theo là khối lượng rễ tươi, với mô hình hai biến giải thích 63% sự thay đổi về số lá. Tác động tích cực lớn nhất đến số lá được tạo ra bởi trọng lượng rễ tươi (0,43), tương quan dương với số lá (0,47). Kết quả cho thấy axit gibberellic và benzyladenine ở nồng độ 200 mg/l đã cải thiện đáng kể sự phát triển hình thái, tổng hợp diệp lục và carotenoid của Liriodendron tulipifera, đồng thời làm giảm hàm lượng đường và carbohydrate hòa tan.
Schefflera arborescens (Hayata) Merr là một loại cây cảnh thường xanh thuộc họ Araliaceae, có nguồn gốc từ Trung Quốc và Đài Loan1. Loại cây này thường được trồng làm cây trồng trong nhà, nhưng chỉ có một loại cây có thể phát triển trong điều kiện như vậy. Lá có từ 5 đến 16 lá chét, mỗi lá dài 10-20 cm2. Cây lùn Schefflera được bán với số lượng lớn hàng năm nhưng các phương pháp làm vườn hiện đại hiếm khi được sử dụng. Vì vậy, việc sử dụng chất điều hòa sinh trưởng thực vật làm công cụ quản lý hiệu quả để cải thiện sự tăng trưởng và sản xuất bền vững các sản phẩm làm vườn cần được quan tâm nhiều hơn. Ngày nay, việc sử dụng chất điều hòa sinh trưởng thực vật đã tăng lên đáng kể3,4,5. Axit Gibberellic là chất điều hòa sinh trưởng thực vật có thể làm tăng năng suất cây trồng6. Một trong những tác dụng được biết đến của nó là kích thích tăng trưởng sinh dưỡng, bao gồm kéo dài thân và rễ cũng như tăng diện tích lá7. Tác dụng đáng kể nhất của gibberellin là tăng chiều cao thân do các đốt dài ra. Phun gibberellin lên lá trên những cây lùn không thể tạo ra gibberellin sẽ làm tăng độ dài thân và chiều cao cây8. Phun axit gibberellic lên lá và hoa ở nồng độ 500 mg/l có thể làm tăng chiều cao, số lượng, chiều rộng và chiều dài của lá9. Gibberellin đã được báo cáo là có tác dụng kích thích sự phát triển của nhiều loại cây lá rộng khác nhau10. Sự kéo dài thân được quan sát thấy ở cây thông Scots (Pinussylvestris) và cây vân sam trắng (Piceaglauca) khi lá được phun axit gibberellic11.
Một nghiên cứu đã xem xét tác động của ba chất điều hòa sinh trưởng thực vật cytokinin đối với sự hình thành nhánh bên ở Lily officinalis. uốn cong Các thí nghiệm được tiến hành vào mùa thu và mùa xuân để nghiên cứu các hiệu ứng theo mùa. Kết quả cho thấy kinetin, benzyladenine và 2-prenyladenine không ảnh hưởng đến sự hình thành các nhánh bổ sung. Tuy nhiên, 500 ppm benzyladenine dẫn đến sự hình thành các nhánh phụ 12,2 và 8,2 trong các thí nghiệm vào mùa thu và mùa xuân, so với 4,9 và 3,9 ở cây đối chứng. Các nghiên cứu đã chỉ ra rằng phương pháp điều trị vào mùa hè hiệu quả hơn phương pháp điều trị vào mùa đông12. Trong một thí nghiệm khác, Peace Lily var. Cây Tassone được xử lý bằng benzyladenine nồng độ 0, 250 và 500 ppm trong chậu có đường kính 10 cm. Kết quả cho thấy việc xử lý đất làm tăng đáng kể số lượng lá bổ sung so với cây đối chứng và cây được xử lý bằng benzyladenine. Những chiếc lá mới bổ sung được quan sát thấy bốn tuần sau khi xử lý và số lượng lá tối đa được quan sát thấy tám tuần sau khi xử lý. Sau 20 tuần xử lý, cây được xử lý bằng đất có mức tăng chiều cao ít hơn so với cây được xử lý trước13. Người ta đã báo cáo rằng benzyladenine ở nồng độ 20 mg/L có thể làm tăng đáng kể chiều cao cây và số lá ở Croton 14. Ở hoa loa kèn, benzyladenine ở nồng độ 500 ppm dẫn đến sự gia tăng số lượng cành, trong khi số lượng của các nhánh là ít nhất trong nhóm đối chứng15. Mục đích của nghiên cứu này là điều tra việc phun axit gibberellic và benzyladenine lên lá để cải thiện sự phát triển của Schefflera lùn, một loại cây lá cảnh. Những chất điều hòa sinh trưởng thực vật này có thể giúp người trồng thương mại lên kế hoạch sản xuất phù hợp quanh năm. Không có nghiên cứu nào được thực hiện để cải thiện sự phát triển của Liriodendron tulipifera.
Nghiên cứu này được thực hiện trong nhà kính nghiên cứu thực vật trong nhà của Đại học Hồi giáo Azad ở Jiloft, Iran. Các cây cấy rễ lùn Schefflera đồng nhất có chiều cao 25±5 cm đã được chuẩn bị (nhân giống sáu tháng trước thí nghiệm) và gieo vào bầu. Nồi bằng nhựa, màu đen, đường kính 20 cm, cao 30 cm16.
Môi trường nuôi cấy trong nghiên cứu này là hỗn hợp than bùn, mùn, cát rửa và trấu theo tỷ lệ 1:1:1:1 (theo thể tích)16. Lót một lớp sỏi dưới đáy chậu để thoát nước. Nhiệt độ trung bình ban ngày và ban đêm trong nhà kính vào cuối mùa xuân và mùa hè lần lượt là 32±2°C và 28±2°C. Độ ẩm tương đối dao động đến >70%. Sử dụng hệ thống phun sương để tưới. Trung bình, cây được tưới 12 lần một ngày. Vào mùa thu và mùa hè, thời gian mỗi lần tưới là 8 phút và khoảng cách giữa các lần tưới là 1 giờ. Cây được trồng tương tự 4 lần, 2, 4, 6 và 8 tuần sau khi gieo bằng dung dịch vi lượng (Công ty Ghoncheh, Iran) ở nồng độ 3 ppm và tưới 100 ml dung dịch mỗi lần. Dung dịch dinh dưỡng chứa N 8 ppm, P 4 ppm, K 5 ppm và các nguyên tố vi lượng Fe, Pb, Zn, Mn, Mo và B.
Ba nồng độ axit gibberellic và chất điều hòa sinh trưởng thực vật benzyladenine (mua từ Sigma) đã được điều chế ở nồng độ 0, 100 và 200 mg/L và phun lên chồi cây theo ba giai đoạn trong khoảng thời gian 15 ngày17. Tween 20 (0,1%) (mua từ Sigma) được sử dụng trong dung dịch để tăng tuổi thọ và tỷ lệ hấp thụ. Vào sáng sớm, dùng bình xịt phun hormone lên chồi và lá cây Liriodendron tulipifera. Cây được phun nước cất.
Chiều cao cây, đường kính thân, diện tích lá, hàm lượng chất diệp lục, số đốt, chiều dài cành cấp 2, số cành cấp 2, thể tích rễ, chiều dài rễ, khối lượng lá, rễ, thân và chất tươi khô, hàm lượng sắc tố quang hợp (diệp lục) a, diệp lục b) Tổng diệp lục, carotenoid, tổng sắc tố), đường khử và carbohydrate hòa tan được đo bằng các phương pháp xử lý khác nhau.
Hàm lượng diệp lục trong lá non được đo 180 ngày sau khi phun bằng máy đo diệp lục (Spad CL-01) từ 9h30 đến 10h sáng (do lá còn tươi). Ngoài ra, diện tích lá được đo 180 ngày sau khi phun thuốc. Cân ba lá từ trên, giữa và dưới thân mỗi chậu. Những chiếc lá này sau đó được sử dụng làm mẫu trên giấy A4 và mẫu kết quả sẽ được cắt ra. Trọng lượng và diện tích bề mặt của một tờ giấy A4 cũng được đo. Sau đó, diện tích của những chiếc lá được tô khuôn sẽ được tính theo tỷ lệ. Ngoài ra, thể tích của rễ được xác định bằng cách sử dụng bình chia độ. Trọng lượng khô của lá, trọng lượng khô của thân, trọng lượng khô của rễ và tổng trọng lượng khô của từng mẫu được đo bằng cách sấy khô ở 72°C trong 48 giờ.
Hàm lượng diệp lục và carotenoid được đo bằng phương pháp Lichtenthaler18. Để làm điều này, 0,1 g lá tươi được nghiền trong cối sứ chứa 15 ml axeton 80% và sau khi lọc, mật độ quang của chúng được đo bằng máy đo quang phổ ở các bước sóng 663,2, 646,8 và 470 nm. Hiệu chuẩn thiết bị bằng axeton 80%. Tính nồng độ các sắc tố quang hợp theo phương trình sau:
Trong số đó, Chl a, Chl b, Chl T và Car lần lượt là diệp lục a, diệp lục b, tổng diệp lục và carotenoids. Kết quả được trình bày theo đơn vị mg/ml.
Lượng đường khử được đo bằng phương pháp Somogy19. Để làm điều này, 0,02 g chồi cây được nghiền trong cối sứ với 10 ml nước cất và đổ vào cốc nhỏ. Đun sôi cốc rồi lọc bằng giấy lọc Whatman số 1 để thu được dịch chiết thực vật. Chuyển 2 ml mỗi dịch chiết vào ống nghiệm và thêm 2 ml dung dịch đồng sunfat. Đậy ống nghiệm bằng bông gòn và đun nóng trong nồi cách thủy ở 100°C trong 20 phút. Ở giai đoạn này, Cu2+ được chuyển thành Cu2O bằng cách khử monosacarit aldehyd và màu cá hồi (màu đất nung) xuất hiện ở đáy ống nghiệm. Sau khi ống nghiệm nguội, thêm 2 ml axit photphomolybdic sẽ xuất hiện màu xanh lam. Lắc mạnh ống cho đến khi màu phân bố đều khắp ống. Đọc độ hấp thụ của dung dịch ở bước sóng 600 nm bằng máy đo quang phổ.
Tính nồng độ đường khử bằng đường chuẩn. Nồng độ carbohydrate hòa tan được xác định bằng phương pháp Fales20. Để làm điều này, 0,1 g mầm được trộn với 2,5 ml ethanol 80% ở 90°C trong 60 phút (hai giai đoạn, mỗi giai đoạn 30 phút) để chiết xuất carbohydrate hòa tan. Dịch chiết sau đó được lọc và làm bay hơi rượu. Kết tủa thu được được hòa tan trong 2,5 ml nước cất. Đổ 200 ml mỗi mẫu vào ống nghiệm và thêm 5 ml chỉ thị anthrone. Hỗn hợp này được đặt trong bể nước ở 90°C trong 17 phút và sau khi làm nguội, độ hấp thụ của nó được xác định ở bước sóng 625 nm.
Thí nghiệm là thí nghiệm giai thừa dựa trên thiết kế hoàn toàn ngẫu nhiên với 4 lần lặp lại. Thủ tục PROC UNIVARIATE được sử dụng để kiểm tra tính chuẩn của phân phối dữ liệu trước khi phân tích phương sai. Phân tích thống kê bắt đầu bằng phân tích thống kê mô tả để hiểu chất lượng của dữ liệu thô được thu thập. Các phép tính được thiết kế để đơn giản hóa và nén các tập dữ liệu lớn để giúp chúng dễ diễn giải hơn. Các phân tích phức tạp hơn sau đó đã được thực hiện. Thử nghiệm của Duncan được thực hiện bằng phần mềm SPSS (phiên bản 24; IBM Corporation, Armonk, NY, USA) để tính bình phương trung bình và sai số thử nghiệm nhằm xác định sự khác biệt giữa các tập dữ liệu. Thử nghiệm bội số của Duncan (DMRT) đã được sử dụng để xác định sự khác biệt giữa các giá trị trung bình ở mức ý nghĩa (0,05 ≤ p). Hệ số tương quan Pearson ( r ) được tính toán bằng phần mềm SPSS (phiên bản 26; IBM Corp., Armonk, NY, USA) để đánh giá mối tương quan giữa các cặp tham số khác nhau. Ngoài ra, phân tích hồi quy tuyến tính được thực hiện bằng phần mềm SPSS (v.26) để dự đoán giá trị của các biến năm thứ nhất dựa trên giá trị của các biến năm thứ hai. Mặt khác, phân tích hồi quy từng bước với p < 0,01 đã được thực hiện để xác định các tính trạng có ảnh hưởng nghiêm trọng đến lá schefflera lùn. Phân tích đường dẫn được tiến hành để xác định tác động trực tiếp và gián tiếp của từng thuộc tính trong mô hình (dựa trên các đặc điểm giải thích rõ hơn sự biến đổi). Tất cả các tính toán trên (tính quy phạm của phân phối dữ liệu, hệ số tương quan đơn giản, hồi quy từng bước và phân tích đường dẫn) được thực hiện bằng phần mềm SPSS V.26.
Các mẫu cây trồng được lựa chọn đều tuân thủ các hướng dẫn của tổ chức, quốc gia và quốc tế có liên quan cũng như luật pháp trong nước của Iran.
Bảng 1 trình bày số liệu thống kê mô tả về giá trị trung bình, độ lệch chuẩn, tối thiểu, tối đa, phạm vi và hệ số biến thiên kiểu hình (CV) đối với các tính trạng khác nhau. Trong số các thống kê này, CV cho phép so sánh các thuộc tính vì nó không thứ nguyên. Lượng đường khử (40,39%), trọng lượng khô của rễ (37,32%), trọng lượng tươi của rễ (37,30%), tỷ lệ đường/đường (30,20%) và thể tích rễ (30%) là cao nhất. và hàm lượng diệp lục (9,88%). ) và diện tích lá có chỉ số cao nhất (11,77%) và có giá trị CV thấp nhất. Bảng 1 cho thấy tổng trọng lượng ướt có phạm vi cao nhất. Tuy nhiên, đặc điểm này không có CV cao nhất. Do đó, nên sử dụng các số liệu không thứ nguyên như CV để so sánh các thay đổi thuộc tính. CV cao cho thấy sự khác biệt lớn giữa các phương pháp điều trị đối với đặc điểm này. Kết quả của thí nghiệm này cho thấy sự khác biệt lớn giữa các phương pháp xử lý ít đường về trọng lượng khô của rễ, trọng lượng rễ tươi, tỷ lệ carbohydrate-đường và đặc điểm thể tích của rễ.
Kết quả phân tích phương sai cho thấy, so với đối chứng, phun qua lá axit gibberellic và benzyladenine có ảnh hưởng rõ rệt đến chiều cao cây, số lá, diện tích lá, thể tích rễ, chiều dài rễ, chỉ số diệp lục, trọng lượng tươi và khô. cân nặng.
So sánh các giá trị trung bình cho thấy chất điều hòa sinh trưởng thực vật có ảnh hưởng rõ rệt đến chiều cao cây và số lá. Các phương pháp điều trị hiệu quả nhất là axit gibberellic ở nồng độ 200 mg/l và axit gibberellic + benzyladenine ở nồng độ 200 mg/l. So với đối chứng, chiều cao cây và số lá tăng lần lượt là 32,92 lần và 62,76 lần (Bảng 2).
Diện tích lá tăng đáng kể ở tất cả các biến thể so với đối chứng, với mức tăng tối đa quan sát được ở mức 200 mg/l đối với axit gibberellic, đạt 89,19 cm2. Kết quả cho thấy diện tích lá tăng lên đáng kể khi tăng nồng độ chất điều hòa sinh trưởng (Bảng 2).
Tất cả các nghiệm thức đều làm tăng đáng kể khối lượng và chiều dài rễ so với đối chứng. Sự kết hợp gibberellic acid + benzyladenine có tác dụng lớn nhất, làm tăng thể tích và chiều dài rễ lên một nửa so với đối chứng (Bảng 2).
Các giá trị cao nhất về đường kính thân và chiều dài lóng được quan sát thấy ở nghiệm thức đối chứng và nghiệm thức axit gibberellic + benzyladenine 200 mg/l tương ứng.
Chỉ số diệp lục đều tăng ở tất cả các giống so với đối chứng. Giá trị cao nhất của đặc điểm này được quan sát thấy khi xử lý bằng axit gibberellic + benzyladenine 200 mg/l, cao hơn đối chứng 30,21% (Bảng 2).
Kết quả cho thấy việc xử lý dẫn đến sự khác biệt đáng kể về hàm lượng sắc tố, giảm lượng đường và carbohydrate hòa tan.
Xử lý bằng axit gibberellic + benzyladenine mang lại hàm lượng sắc tố quang hợp tối đa. Dấu hiệu này cao hơn đáng kể ở tất cả các biến thể so với đối chứng.
Kết quả cho thấy tất cả các nghiệm thức đều có thể làm tăng hàm lượng chất diệp lục ở cây lùn Schefflera. Tuy nhiên, giá trị cao nhất của đặc điểm này được quan sát thấy ở nghiệm thức với axit gibberellic + benzyladenine, cao hơn 36,95% so với đối chứng (Bảng 3).
Kết quả đối với diệp lục b hoàn toàn tương tự với kết quả đối với diệp lục a, khác biệt duy nhất là hàm lượng diệp lục b tăng cao hơn đối chứng 67,15% (Bảng 3).
Việc điều trị dẫn đến sự gia tăng đáng kể về tổng chất diệp lục so với đối chứng. Xử lý bằng axit gibberellic 200 mg/l + benzyladenine 100 mg/l cho giá trị tính trạng này cao nhất, cao hơn 50% so với đối chứng (Bảng 3). Theo kết quả, việc kiểm soát và xử lý bằng benzyladenine với liều 100 mg/l cho tỷ lệ cao nhất về tính trạng này. Liriodendron tulipifera có giá trị carotenoid cao nhất (Bảng 3).
Kết quả cho thấy khi xử lý bằng axit gibberellic ở nồng độ 200 mg/L, hàm lượng diệp lục a tăng lên đáng kể thành diệp lục b (Hình 1).
Tác dụng của axit gibberellic và benzyladenine đối với a/b Ch. Tỷ lệ của schefflera lùn. (GA3: axit gibberellic và BA: benzyladenine). Các chữ cái giống nhau trong mỗi hình cho thấy không có sự khác biệt đáng kể (P < 0,01).
Hiệu quả của mỗi phương pháp xử lý đối với trọng lượng tươi và khô của gỗ schefflera lùn cao hơn đáng kể so với đối chứng. Axit Gibberellic + benzyladenine ở liều 200 mg/l là nghiệm thức có hiệu quả nhất, tăng trọng lượng tươi 138,45% so với đối chứng. So với đối chứng, tất cả các nghiệm thức xử lý ngoại trừ 100 mg/L benzyladenine đều làm tăng đáng kể trọng lượng khô của cây và 200 mg/L gibberellic acid + benzyladenine mang lại giá trị cao nhất cho tính trạng này (Bảng 4).
Hầu hết các biến thể khác biệt đáng kể so với đối chứng về mặt này, với giá trị cao nhất thuộc về 100 và 200 mg/l benzyladenine và 200 mg/l axit gibberellic + benzyladenine (Hình 2).
Ảnh hưởng của axit gibberellic và benzyladenine đến tỷ lệ carbohydrate hòa tan và đường khử ở cây lùn schefflera. (GA3: axit gibberellic và BA: benzyladenine). Các chữ cái giống nhau trong mỗi hình cho thấy không có sự khác biệt đáng kể (P < 0,01).
Phân tích hồi quy từng bước được thực hiện để xác định các thuộc tính thực tế và hiểu rõ hơn mối quan hệ giữa các biến độc lập và số lá ở Liriodendron tulipifera. Khối lượng gốc là biến đầu tiên được đưa vào mô hình, giải thích 44% biến thể. Biến tiếp theo là trọng lượng rễ tươi và hai biến này giải thích 63% sự thay đổi về số lá (Bảng 5).
Phân tích đường dẫn được thực hiện để diễn giải tốt hơn hồi quy từng bước (Bảng 6 và Hình 3). Tác động tích cực lớn nhất đến số lá có liên quan đến khối lượng rễ tươi (0,43), tương quan dương với số lá (0,47). Điều này chỉ ra rằng đặc điểm này ảnh hưởng trực tiếp đến năng suất, trong khi tác động gián tiếp của nó thông qua các đặc điểm khác là không đáng kể, và đặc điểm này có thể được sử dụng làm tiêu chí lựa chọn trong các chương trình nhân giống cây lùn schefflera. Tác động trực tiếp của thể tích rễ là âm (-0,67). Ảnh hưởng của đặc điểm này đến số lá là trực tiếp, ảnh hưởng gián tiếp không đáng kể. Điều này cho thấy khối lượng rễ càng lớn thì số lượng lá càng ít.
Hình 4 cho thấy những thay đổi trong hồi quy tuyến tính của thể tích rễ và lượng đường khử. Theo hệ số hồi quy, mỗi đơn vị thay đổi về chiều dài rễ và carbohydrate hòa tan có nghĩa là thể tích rễ và đường khử thay đổi lần lượt là 0,6019 và 0,311 đơn vị.
Hệ số tương quan Pearson các tính trạng sinh trưởng được thể hiện trên Hình 5. Kết quả cho thấy số lá và chiều cao cây (0,379*) có mối tương quan thuận và có ý nghĩa cao nhất.
Bản đồ nhiệt về mối quan hệ giữa các biến trong hệ số tương quan tốc độ tăng trưởng. # Trục Y: 1-Ch., 2-Lợi, 3-LAI, 4-N lá, 5-Chiều cao chân, đường kính 6-Thân. # Dọc theo trục X: Chỉ số A – H, B – khoảng cách giữa các mắt, C – LAI, D – N. của lá, E – chiều cao chân, F – đường kính thân.
Hệ số tương quan Pearson cho các thuộc tính liên quan đến trọng lượng ướt được trình bày trong Hình 6. Kết quả cho thấy mối quan hệ giữa trọng lượng ướt của lá và trọng lượng khô trên mặt đất (0,834**), tổng trọng lượng khô (0,913**) và trọng lượng khô của rễ (0,562* ). . Tổng khối lượng khô có mối tương quan dương cao nhất và có ý nghĩa nhất với khối lượng khô của chồi (0,790**) và khối lượng khô của rễ (0,741**).
Bản đồ nhiệt về mối quan hệ giữa các biến hệ số tương quan trọng lượng tươi. Trục # Y: 1 – trọng lượng lá tươi, 2 – trọng lượng nụ tươi, 3 – trọng lượng rễ tươi, 4 – tổng trọng lượng lá tươi. # Trục X: A – trọng lượng lá tươi, B – trọng lượng nụ tươi, CW – trọng lượng rễ tươi, D – tổng trọng lượng tươi.
Các hệ số tương quan Pearson cho các thuộc tính liên quan đến trọng lượng khô được thể hiện trên Hình 7. Kết quả cho thấy trọng lượng khô của lá, trọng lượng khô của chồi (0,848**) và trọng lượng khô tổng cộng (0,947**), trọng lượng khô của chồi (0,854**) và tổng khối lượng khô (0,781**) có giá trị cao nhất. tương quan dương và tương quan có ý nghĩa.
Bản đồ nhiệt về mối quan hệ giữa các biến hệ số tương quan trọng lượng khô. # Trục Y biểu thị: trọng lượng khô 1 lá, trọng lượng khô 2 nụ, trọng lượng khô 3 rễ, trọng lượng khô tổng cộng 4. # Trục X: Trọng lượng khô của lá A, trọng lượng khô của chồi B, trọng lượng khô của rễ CW, trọng lượng khô tổng cộng của D.
Hệ số tương quan Pearson của các tính chất sắc tố được thể hiện trên Hình 8. Kết quả cho thấy diệp lục a và diệp lục b (0,716**), diệp lục tổng số (0,968**) và sắc tố tổng số (0,954**); diệp lục b và diệp lục tổng số (0,868**) và tổng sắc tố (0,851**); tổng diệp lục có mối tương quan dương và có ý nghĩa thống kê cao nhất với tổng sắc tố (0,984**).
Bản đồ nhiệt về mối quan hệ giữa các biến hệ số tương quan diệp lục. # Trục Y: 1- Kênh a, 2- Kênh. tỷ lệ b,3 – a/b, 4 kênh. Tổng cộng, 5-carotenoid, sắc tố 6 năng suất. # Trục X: A-Ch. aB-Ch. tỷ lệ b,C- a/b, D-Ch. Tổng hàm lượng, E-carotenoid, hiệu suất F của sắc tố.
Lùn Schefflera là một loại cây trồng trong nhà phổ biến trên toàn thế giới, sự sinh trưởng và phát triển của nó ngày nay đang nhận được nhiều sự chú ý. Việc sử dụng chất điều hòa sinh trưởng thực vật đã dẫn đến những khác biệt đáng kể, với tất cả các phương pháp xử lý đều làm tăng chiều cao cây so với đối chứng. Mặc dù chiều cao của cây thường được kiểm soát về mặt di truyền nhưng nghiên cứu cho thấy rằng việc áp dụng các chất điều hòa sinh trưởng thực vật có thể làm tăng hoặc giảm chiều cao của cây. Chiều cao cây và số lá được xử lý bằng axit gibberellic + benzyladenine 200 mg/L là cao nhất, lần lượt đạt 109 cm và 38,25. Phù hợp với các nghiên cứu trước đây (SalehiSardoei et al.52) và Spathiphyllum23, sự gia tăng tương tự về chiều cao cây do xử lý bằng axit gibberellic đã được quan sát thấy ở các loài cúc vạn thọ trong chậu, albus alba21, hoa ban ngày22, hoa ban ngày, trầm hương và hoa huệ hòa bình.
Axit Gibberellic (GA) đóng vai trò quan trọng trong các quá trình sinh lý khác nhau của thực vật. Chúng kích thích sự phân chia tế bào, kéo dài tế bào, kéo dài thân và tăng kích thước24. GA gây ra sự phân chia và kéo dài tế bào ở đỉnh chồi và mô phân sinh25. Những thay đổi của lá cũng bao gồm giảm độ dày thân, kích thước lá nhỏ hơn và màu xanh tươi hơn26. Các nghiên cứu sử dụng các yếu tố ức chế hoặc kích thích đã chỉ ra rằng các ion canxi từ các nguồn bên trong đóng vai trò là chất truyền tin thứ hai trong con đường truyền tín hiệu gibberellin ở lúa miến tràng hoa27. HA làm tăng chiều dài cây bằng cách kích thích tổng hợp các enzym gây giãn thành tế bào như XET hoặc XTH, expansin và PME28. Điều này làm cho các tế bào to ra khi thành tế bào giãn ra và nước xâm nhập vào tế bào29. Việc áp dụng GA7, GA3 và GA4 có thể làm tăng độ giãn dài của thân cây30,31. Axit gibberellic gây ra sự kéo dài thân ở cây lùn và ở cây hoa thị, GA làm chậm sự phát triển của lá và kéo dài các lóng32. Tuy nhiên, trước giai đoạn sinh sản, chiều dài thân tăng lên gấp 4–5 lần chiều cao ban đầu33. Quá trình sinh tổng hợp GA ở thực vật được tóm tắt trên Hình 9.
Sinh tổng hợp GA ở thực vật và mức độ GA có hoạt tính sinh học nội sinh, biểu diễn sơ đồ của thực vật (phải) và sinh tổng hợp GA (trái). Các mũi tên được mã hóa màu tương ứng với dạng HA được chỉ định dọc theo con đường sinh tổng hợp; mũi tên đỏ biểu thị mức GC giảm do sự định vị trong các cơ quan thực vật và mũi tên đen biểu thị mức GC tăng. Ở nhiều loại cây, chẳng hạn như lúa và dưa hấu, hàm lượng GA cao hơn ở phần gốc hoặc phần dưới của lá30. Hơn nữa, một số báo cáo chỉ ra rằng hàm lượng GA có hoạt tính sinh học giảm khi lá kéo dài ra khỏi gốc34. Mức độ chính xác của gibberellin trong những trường hợp này vẫn chưa được biết.
Chất điều hòa sinh trưởng thực vật cũng ảnh hưởng đáng kể đến số lượng và diện tích lá. Kết quả cho thấy việc tăng nồng độ chất điều hòa sinh trưởng thực vật làm tăng đáng kể diện tích và số lượng lá. Benzyladenine đã được báo cáo là làm tăng sản lượng lá calla15. Theo kết quả của nghiên cứu này, tất cả các phương pháp xử lý đều cải thiện diện tích và số lượng lá. Axit Gibberellic + benzyladenine là phương pháp xử lý hiệu quả nhất và mang lại số lượng và diện tích lá lớn nhất. Khi trồng cây lùn trong nhà, số lượng lá có thể tăng lên rõ rệt.
Điều trị bằng GA3 làm tăng chiều dài lóng so với benzyladenine (BA) hoặc không điều trị bằng nội tiết tố. Kết quả này là hợp lý khi xét đến vai trò của GA trong việc thúc đẩy tăng trưởng7. Sự phát triển của thân cây cũng cho kết quả tương tự. Axit gibberellic làm tăng chiều dài của thân cây nhưng làm giảm đường kính của nó. Tuy nhiên, việc áp dụng kết hợp BA và GA3 đã làm tăng đáng kể chiều dài thân cây. Mức tăng này cao hơn so với cây được xử lý bằng BA hoặc không có hormone. Mặc dù axit gibberellic và cytokinin (CK) thường thúc đẩy tăng trưởng thực vật nhưng trong một số trường hợp, chúng có tác dụng trái ngược nhau đối với các quá trình khác nhau35. Ví dụ, người ta quan sát thấy sự tương tác tiêu cực khi tăng chiều dài trụ dưới lá mầm ở những cây được xử lý bằng GA và BA36. Mặt khác, BA làm tăng đáng kể khối lượng rễ (Bảng 1). Khối lượng rễ tăng lên do BA ngoại sinh đã được báo cáo ở nhiều loài thực vật (ví dụ như các loài Dendrobium và Orchid)37,38.
Tất cả các biện pháp xử lý bằng hormone đều làm tăng số lượng lá mới. Sự gia tăng tự nhiên về diện tích lá và chiều dài thân thông qua các phương pháp xử lý kết hợp là mong muốn về mặt thương mại. Số lượng lá mới là một chỉ số quan trọng cho sự phát triển sinh dưỡng. Việc sử dụng hormone ngoại sinh chưa được sử dụng trong sản xuất thương mại Liriodendron tulipifera. Tuy nhiên, tác dụng thúc đẩy tăng trưởng của GA và CK, được áp dụng một cách cân bằng, có thể mang lại những hiểu biết mới trong việc cải thiện việc trồng loại cây này. Đáng chú ý, tác dụng hiệp đồng của điều trị bằng BA + GA3 cao hơn so với điều trị bằng GA hoặc BA đơn thuần. Axit Gibberellic làm tăng số lượng lá mới. Khi lá mới phát triển, việc tăng số lượng lá mới có thể hạn chế sự phát triển của lá39. GA đã được báo cáo là cải thiện việc vận chuyển sucrose từ bể đến các cơ quan nguồn40,41. Ngoài ra, việc sử dụng GA ngoại sinh cho cây lâu năm có thể thúc đẩy sự phát triển của các cơ quan sinh dưỡng như lá và rễ, do đó ngăn cản quá trình chuyển đổi từ sinh trưởng sinh dưỡng sang sinh trưởng sinh sản42.
Tác dụng của GA đối với việc tăng chất khô của cây có thể được giải thích bằng sự gia tăng quá trình quang hợp do tăng diện tích lá43. GA được báo cáo là nguyên nhân làm tăng diện tích lá của Maize34. Kết quả cho thấy, tăng nồng độ BA lên 200 mg/L có thể làm tăng chiều dài, số nhánh cấp 2 và thể tích rễ. Axit Gibberellic ảnh hưởng đến các quá trình của tế bào như kích thích sự phân chia và kéo dài tế bào, từ đó cải thiện sự phát triển của sinh vật43. Ngoài ra, HA mở rộng thành tế bào bằng cách thủy phân tinh bột thành đường, do đó làm giảm thế năng nước của tế bào, khiến nước xâm nhập vào tế bào và cuối cùng dẫn đến sự kéo dài tế bào44.
Thời gian đăng: May-08-2024