Cảm ơn bạn đã ghé thăm Nature.com. Phiên bản trình duyệt bạn đang sử dụng có hỗ trợ CSS hạn chế. Để có kết quả tốt nhất, chúng tôi khuyên bạn nên sử dụng phiên bản trình duyệt mới hơn (hoặc tắt chế độ tương thích trong Internet Explorer). Trong thời gian chờ đợi, để đảm bảo hỗ trợ liên tục, chúng tôi đang hiển thị trang web mà không có kiểu dáng hoặc JavaScript.
Các loại cây cảnh lá xanh tốt, có vẻ ngoài tươi tốt rất được ưa chuộng. Một trong những cách để đạt được điều này là sử dụng chất điều hòa sinh trưởng thực vật như công cụ quản lý sự phát triển của cây. Nghiên cứu được tiến hành trên cây Schefflera lùn (một loại cây cảnh lá xanh) được xử lý bằng cách phun hormone axit gibberellic và benzyladenine lên lá trong nhà kính được trang bị hệ thống tưới phun sương. Hormone được phun lên lá cây Schefflera lùn ở nồng độ 0, 100 và 200 mg/l trong ba giai đoạn, cách nhau 15 ngày. Thí nghiệm được tiến hành trên cơ sở nhân tố trong thiết kế hoàn toàn ngẫu nhiên với bốn lần lặp lại. Sự kết hợp của axit gibberellic và benzyladenine ở nồng độ 200 mg/l có tác động đáng kể đến số lượng lá, diện tích lá và chiều cao cây. Xử lý này cũng cho kết quả hàm lượng sắc tố quang hợp cao nhất. Ngoài ra, tỷ lệ carbohydrate hòa tan và đường khử cao nhất được quan sát thấy ở các nghiệm thức benzyladenine 100 và 200 mg/L và gibberellin + benzyladenine 200 mg/L. Phân tích hồi quy từng bước cho thấy thể tích rễ là biến số đầu tiên được đưa vào mô hình, giải thích 44% sự biến thiên. Biến số tiếp theo là khối lượng rễ tươi, với mô hình hai biến giải thích 63% sự biến thiên về số lượng lá. Tác động tích cực lớn nhất đến số lượng lá là do khối lượng rễ tươi (0,43), có tương quan thuận với số lượng lá (0,47). Kết quả cho thấy axit gibberellic và benzyladenine ở nồng độ 200 mg/l đã cải thiện đáng kể sự sinh trưởng hình thái, tổng hợp chất diệp lục và carotenoid của Liriodendron tulipifera, đồng thời làm giảm hàm lượng đường và carbohydrate hòa tan.
Schefflera arborescens (Hayata) Merr là một loại cây cảnh thường xanh thuộc họ Araliaceae, có nguồn gốc từ Trung Quốc và Đài Loan1. Loại cây này thường được trồng trong nhà, nhưng chỉ có thể trồng được một cây trong điều kiện như vậy. Lá có từ 5 đến 16 lá chét, mỗi lá dài 10-20 cm2. Schefflera lùn được bán với số lượng lớn mỗi năm, nhưng các phương pháp làm vườn hiện đại lại ít được sử dụng. Do đó, việc sử dụng các chất điều hòa sinh trưởng thực vật như một công cụ quản lý hiệu quả để cải thiện sự sinh trưởng và sản xuất bền vững các sản phẩm làm vườn cần được chú trọng hơn. Ngày nay, việc sử dụng các chất điều hòa sinh trưởng thực vật đã tăng lên đáng kể3,4,5. Axit gibberellic là một chất điều hòa sinh trưởng thực vật có thể làm tăng năng suất cây trồng6. Một trong những tác dụng được biết đến của nó là kích thích sự sinh trưởng thực vật, bao gồm sự kéo dài thân và rễ và tăng diện tích lá7. Tác dụng đáng kể nhất của gibberellin là làm tăng chiều cao thân do sự kéo dài các lóng thân. Phun gibberellin lên lá của những cây lùn không thể tự sản sinh gibberellin sẽ làm tăng chiều dài thân và chiều cao cây8. Phun axit gibberellic lên hoa và lá với nồng độ 500 mg/l có thể làm tăng chiều cao, số lượng, chiều rộng và chiều dài lá9. Gibberellin được báo cáo là có tác dụng kích thích sự phát triển của nhiều loại cây lá rộng10. Hiện tượng thân cây dài ra đã được quan sát thấy ở cây thông Scots (Pinus sylvestris) và cây vân sam trắng (Pice aglauca) khi lá được phun axit gibberellic11.
Một nghiên cứu đã xem xét tác động của ba chất điều hòa sinh trưởng thực vật cytokinin lên sự hình thành cành bên ở cây Lily officinalis. Các thí nghiệm được tiến hành vào mùa thu và mùa xuân để nghiên cứu ảnh hưởng theo mùa. Kết quả cho thấy kinetin, benzyladenine và 2-prenyladenine không ảnh hưởng đến sự hình thành cành phụ. Tuy nhiên, 500 ppm benzyladenine dẫn đến sự hình thành 12,2 và 8,2 cành phụ trong các thí nghiệm mùa thu và mùa xuân, tương ứng, so với 4,9 và 3,9 cành ở cây đối chứng. Các nghiên cứu đã chỉ ra rằng xử lý vào mùa hè hiệu quả hơn xử lý vào mùa đông12. Trong một thí nghiệm khác, cây Peace Lily var. Tassone được xử lý bằng 0, 250 và 500 ppm benzyladenine trong chậu đường kính 10 cm. Kết quả cho thấy việc xử lý đất làm tăng đáng kể số lượng lá phụ so với cây đối chứng và cây được xử lý bằng benzyladenine. Lá phụ mới được quan sát thấy bốn tuần sau khi xử lý, và sản lượng lá tối đa được quan sát thấy tám tuần sau khi xử lý. Sau 20 tuần điều trị, cây được xử lý đất có mức tăng chiều cao thấp hơn so với cây được xử lý trước đó13. Người ta đã báo cáo rằng benzyladenine ở nồng độ 20 mg/L có thể làm tăng đáng kể chiều cao cây và số lượng lá ở cây Croton 14. Ở hoa loa kèn, benzyladenine ở nồng độ 500 ppm đã làm tăng số lượng cành, trong khi số lượng cành ít nhất ở nhóm đối chứng15. Mục đích của nghiên cứu này là điều tra việc phun axit gibberellic và benzyladenine lên lá để cải thiện sự sinh trưởng của Schefflera dwarfa, một loại cây cảnh lá. Các chất điều hòa sinh trưởng thực vật này có thể giúp người trồng thương mại lập kế hoạch sản xuất phù hợp quanh năm. Chưa có nghiên cứu nào được thực hiện để cải thiện sự sinh trưởng của Liriodendron tulipifera.
Nghiên cứu này được tiến hành trong nhà kính nghiên cứu cây trồng trong nhà của Đại học Azad Hồi giáo ở Jiloft, Iran. Các cây con Schefflera lùn đồng nhất có chiều cao 25±5 cm được chuẩn bị (nhân giống sáu tháng trước khi thí nghiệm) và gieo vào chậu. Chậu làm bằng nhựa, màu đen, đường kính 20 cm và chiều cao 30 cm16.
Môi trường nuôi cấy trong nghiên cứu này là hỗn hợp than bùn, mùn, cát đã rửa sạch và vỏ trấu theo tỷ lệ 1:1:1:1 (theo thể tích)16. Đặt một lớp sỏi ở đáy chậu để thoát nước. Nhiệt độ trung bình ban ngày và ban đêm trong nhà kính vào cuối mùa xuân và mùa hè lần lượt là 32±2°C và 28±2°C. Độ ẩm tương đối dao động trên 70%. Sử dụng hệ thống phun sương để tưới tiêu. Trung bình, cây được tưới 12 lần một ngày. Vào mùa thu và mùa hè, thời gian mỗi lần tưới là 8 phút, và khoảng thời gian giữa các lần tưới là 1 giờ. Cây được trồng tương tự bốn lần, 2, 4, 6 và 8 tuần sau khi gieo hạt, với dung dịch vi chất dinh dưỡng (Công ty Ghoncheh, Iran) ở nồng độ 3 ppm và tưới 100 ml dung dịch mỗi lần. Dung dịch dinh dưỡng chứa 8 ppm N, 4 ppm P, 5 ppm K và các nguyên tố vi lượng Fe, Pb, Zn, Mn, Mo và B.
Ba nồng độ khác nhau của axit gibberellic và chất điều hòa sinh trưởng thực vật benzyladenine (mua từ Sigma) được pha chế ở mức 0, 100 và 200 mg/L và phun lên chồi cây theo ba giai đoạn với khoảng thời gian 15 ngày17. Tween 20 (0,1%) (mua từ Sigma) được sử dụng trong dung dịch để tăng thời gian tồn tại và tốc độ hấp thụ. Vào sáng sớm, phun hormone lên chồi và lá của Liriodendron tulipifera bằng bình phun. Cây được phun nước cất.
Chiều cao cây, đường kính thân, diện tích lá, hàm lượng diệp lục, số lóng, chiều dài cành phụ, số lượng cành phụ, thể tích rễ, chiều dài rễ, khối lượng lá, rễ, thân và chất khô tươi, hàm lượng sắc tố quang hợp (diệp lục a, diệp lục b), tổng diệp lục, carotenoid, tổng sắc tố), đường khử và carbohydrate hòa tan được đo trong các nghiệm thức khác nhau.
Hàm lượng diệp lục của lá non được đo 180 ngày sau khi phun bằng máy đo diệp lục (Spad CL-01) từ 9:30 đến 10 giờ sáng (do lá còn tươi). Ngoài ra, diện tích lá cũng được đo 180 ngày sau khi phun. Cân ba lá ở ngọn, giữa và gốc thân của mỗi chậu. Sau đó, dùng những lá này làm mẫu trên giấy A4 và cắt theo mẫu đã cắt. Cân trọng lượng và diện tích bề mặt của một tờ giấy A4. Sau đó, tính diện tích của lá đã cắt theo mẫu bằng cách sử dụng tỷ lệ. Thêm vào đó, thể tích rễ được xác định bằng ống đong chia vạch. Trọng lượng khô của lá, trọng lượng khô của thân, trọng lượng khô của rễ và tổng trọng lượng khô của mỗi mẫu được đo bằng cách sấy khô trong lò ở 72°C trong 48 giờ.
Hàm lượng chất diệp lục và carotenoid được đo bằng phương pháp Lichtenthaler18. Để thực hiện điều này, 0,1 g lá tươi được nghiền trong cối sứ chứa 15 ml acetone 80%, và sau khi lọc, mật độ quang học của chúng được đo bằng máy quang phổ ở các bước sóng 663,2, 646,8 và 470 nm. Hiệu chuẩn thiết bị bằng acetone 80%. Tính toán nồng độ sắc tố quang hợp bằng phương trình sau:
Trong đó, Chl a, Chl b, Chl T và Car lần lượt đại diện cho diệp lục a, diệp lục b, tổng diệp lục và carotenoid. Kết quả được trình bày theo đơn vị mg/ml/cây.
Lượng đường khử được đo bằng phương pháp Somogy19. Để thực hiện điều này, 0,02 g chồi cây được nghiền trong cối sứ với 10 ml nước cất và đổ vào một cốc thủy tinh nhỏ. Đun sôi cốc thủy tinh rồi lọc phần bên trong bằng giấy lọc Whatman số 1 để thu được dịch chiết thực vật. Chuyển 2 ml mỗi dịch chiết vào ống nghiệm và thêm 2 ml dung dịch đồng sunfat. Đậy ống nghiệm bằng bông gòn và đun nóng trong bể nước ở 100°C trong 20 phút. Ở giai đoạn này, Cu2+ được chuyển hóa thành Cu2O bằng cách khử các monosaccharide aldehyd và màu cá hồi (màu đất nung) sẽ xuất hiện ở đáy ống nghiệm. Sau khi ống nghiệm nguội, thêm 2 ml axit phosphomolybdic và màu xanh lam sẽ xuất hiện. Lắc mạnh ống nghiệm cho đến khi màu phân bố đều khắp ống. Đọc độ hấp thụ của dung dịch ở bước sóng 600 nm bằng máy quang phổ.
Tính toán nồng độ đường khử bằng cách sử dụng đường cong chuẩn. Nồng độ carbohydrate hòa tan được xác định bằng phương pháp Fales20. Để thực hiện điều này, 0,1 g giá đỗ được trộn với 2,5 ml etanol 80% ở 90 °C trong 60 phút (hai giai đoạn, mỗi giai đoạn 30 phút) để chiết xuất carbohydrate hòa tan. Sau đó, dịch chiết được lọc và cồn được làm bay hơi. Kết tủa thu được được hòa tan trong 2,5 ml nước cất. Đổ 200 ml mỗi mẫu vào ống nghiệm và thêm 5 ml chất chỉ thị anthrone. Hỗn hợp được đặt trong bể nước ở 90°C trong 17 phút, và sau khi làm nguội, độ hấp thụ của nó được xác định ở bước sóng 625 nm.
Thí nghiệm được tiến hành theo thiết kế ngẫu nhiên hoàn toàn với bốn lần lặp lại. Thủ tục PROC UNIVARIATE được sử dụng để kiểm tra tính chuẩn của phân bố dữ liệu trước khi phân tích phương sai. Phân tích thống kê bắt đầu bằng phân tích thống kê mô tả để hiểu chất lượng của dữ liệu thô thu thập được. Các phép tính được thiết kế để đơn giản hóa và nén các tập dữ liệu lớn nhằm giúp chúng dễ diễn giải hơn. Sau đó, các phân tích phức tạp hơn đã được thực hiện. Kiểm định Duncan được thực hiện bằng phần mềm SPSS (phiên bản 24; IBM Corporation, Armonk, NY, USA) để tính toán bình phương trung bình và sai số thực nghiệm nhằm xác định sự khác biệt giữa các tập dữ liệu. Kiểm định đa biến Duncan (DMRT) được sử dụng để xác định sự khác biệt giữa các giá trị trung bình ở mức ý nghĩa (0,05 ≤ p). Hệ số tương quan Pearson (r) được tính toán bằng phần mềm SPSS (phiên bản 26; IBM Corp., Armonk, NY, USA) để đánh giá mối tương quan giữa các cặp tham số khác nhau. Ngoài ra, phân tích hồi quy tuyến tính được thực hiện bằng phần mềm SPSS (phiên bản 26) để dự đoán giá trị của các biến năm thứ nhất dựa trên giá trị của các biến năm thứ hai. Mặt khác, phân tích hồi quy từng bước với p < 0,01 được thực hiện để xác định các đặc điểm ảnh hưởng quan trọng đến lá cây Schefflera lùn. Phân tích đường dẫn được tiến hành để xác định các tác động trực tiếp và gián tiếp của từng thuộc tính trong mô hình (dựa trên các đặc điểm giải thích tốt hơn sự biến thiên). Tất cả các phép tính trên (tính chuẩn của phân bố dữ liệu, hệ số tương quan đơn giản, hồi quy từng bước và phân tích đường dẫn) được thực hiện bằng phần mềm SPSS phiên bản 26.
Các mẫu cây trồng được lựa chọn tuân thủ các hướng dẫn của các tổ chức, quốc gia và quốc tế có liên quan cũng như luật pháp trong nước của Iran.
Bảng 1 trình bày số liệu thống kê mô tả về giá trị trung bình, độ lệch chuẩn, giá trị tối thiểu, tối đa, phạm vi và hệ số biến dị kiểu hình (CV) cho các đặc điểm khác nhau. Trong số các số liệu thống kê này, CV cho phép so sánh các thuộc tính vì nó không có đơn vị. Hàm lượng đường khử (40,39%), trọng lượng khô của rễ (37,32%), trọng lượng tươi của rễ (37,30%), tỷ lệ đường trên đường (30,20%) và thể tích rễ (30%) là cao nhất. Hàm lượng diệp lục (9,88%) và diện tích lá có chỉ số cao nhất (11,77%) và có giá trị CV thấp nhất. Bảng 1 cho thấy tổng trọng lượng tươi có phạm vi cao nhất. Tuy nhiên, đặc điểm này không có CV cao nhất. Do đó, các chỉ số không có đơn vị như CV nên được sử dụng để so sánh sự thay đổi của các thuộc tính. CV cao cho thấy sự khác biệt lớn giữa các phương pháp xử lý đối với đặc điểm này. Kết quả thí nghiệm này cho thấy sự khác biệt lớn giữa các phương pháp xử lý ít đường về trọng lượng khô của rễ, trọng lượng tươi của rễ, tỷ lệ carbohydrate trên đường và thể tích rễ.
Kết quả phân tích phương sai cho thấy, so với nhóm đối chứng, phun dung dịch gibberellic acid và benzyladenine lên lá có tác động đáng kể đến chiều cao cây, số lá, diện tích lá, thể tích rễ, chiều dài rễ, chỉ số diệp lục, trọng lượng tươi và trọng lượng khô.
So sánh giá trị trung bình cho thấy các chất điều hòa sinh trưởng thực vật có tác động đáng kể đến chiều cao cây và số lá. Các phương pháp xử lý hiệu quả nhất là axit gibberellic ở nồng độ 200 mg/l và hỗn hợp axit gibberellic + benzyladenine ở nồng độ 200 mg/l. So với đối chứng, chiều cao cây và số lá tăng lần lượt 32,92 lần và 62,76 lần (Bảng 2).
Diện tích lá tăng đáng kể ở tất cả các biến thể so với nhóm đối chứng, với mức tăng tối đa được quan sát thấy ở nồng độ axit gibberellic 200 mg/l, đạt 89,19 cm2. Kết quả cho thấy diện tích lá tăng đáng kể khi nồng độ chất điều hòa sinh trưởng tăng lên (Bảng 2).
Tất cả các phương pháp điều trị đều làm tăng đáng kể thể tích và chiều dài rễ so với nhóm đối chứng. Sự kết hợp giữa axit gibberellic và benzyladenine có tác dụng mạnh nhất, làm tăng thể tích và chiều dài rễ lên gấp rưỡi so với nhóm đối chứng (Bảng 2).
Các giá trị cao nhất về đường kính thân và chiều dài lóng thân được quan sát thấy lần lượt ở nhóm đối chứng và nhóm xử lý bằng axit gibberellic + benzyladenine 200 mg/l.
Chỉ số diệp lục tăng lên ở tất cả các biến thể so với nhóm đối chứng. Giá trị cao nhất của đặc điểm này được quan sát thấy khi xử lý bằng axit gibberellic + benzyladenine 200 mg/l, cao hơn 30,21% so với nhóm đối chứng (Bảng 2).
Kết quả cho thấy phương pháp điều trị này đã tạo ra những khác biệt đáng kể về hàm lượng sắc tố, giảm lượng đường và carbohydrate hòa tan.
Việc xử lý bằng axit gibberellic + benzyladenine đã mang lại hàm lượng sắc tố quang hợp tối đa. Dấu hiệu này cao hơn đáng kể ở tất cả các biến thể so với nhóm đối chứng.
Kết quả cho thấy tất cả các phương pháp xử lý đều có thể làm tăng hàm lượng diệp lục của cây Schefflera lùn. Tuy nhiên, giá trị cao nhất của đặc điểm này được quan sát thấy ở phương pháp xử lý bằng axit gibberellic + benzyladenine, cao hơn 36,95% so với đối chứng (Bảng 3).
Kết quả đối với chất diệp lục b hoàn toàn tương tự với kết quả đối với chất diệp lục a, điểm khác biệt duy nhất là hàm lượng chất diệp lục b tăng lên, cao hơn 67,15% so với nhóm đối chứng (Bảng 3).
Phương pháp xử lý đã dẫn đến sự gia tăng đáng kể tổng lượng chất diệp lục so với nhóm đối chứng. Xử lý bằng axit gibberellic 200 mg/l + benzyladenine 100 mg/l cho kết quả cao nhất về đặc điểm này, cao hơn 50% so với nhóm đối chứng (Bảng 3). Theo kết quả, nhóm đối chứng và nhóm xử lý bằng benzyladenine ở liều 100 mg/l cho tỷ lệ cao nhất về đặc điểm này. Liriodendron tulipifera có giá trị carotenoid cao nhất (Bảng 3).
Kết quả cho thấy khi được xử lý bằng axit gibberellic ở nồng độ 200 mg/L, hàm lượng diệp lục a tăng lên đáng kể thành diệp lục b (Hình 1).
Ảnh hưởng của axit gibberellic và benzyladenine lên tỷ lệ a/b Ch. của cây schefflera lùn. (GA3: axit gibberellic và BA: benzyladenine). Các chữ cái giống nhau trong mỗi hình biểu thị không có sự khác biệt đáng kể (P < 0,01).
Tác động của mỗi phương pháp xử lý lên trọng lượng tươi và trọng lượng khô của gỗ cây schefflera lùn cao hơn đáng kể so với đối chứng. Axit gibberellic + benzyladenine ở liều lượng 200 mg/l là phương pháp xử lý hiệu quả nhất, làm tăng trọng lượng tươi lên 138,45% so với đối chứng. So với đối chứng, tất cả các phương pháp xử lý ngoại trừ benzyladenine 100 mg/L đều làm tăng đáng kể trọng lượng khô của cây, và hỗn hợp axit gibberellic + benzyladenine 200 mg/L cho kết quả cao nhất về đặc điểm này (Bảng 4).
Hầu hết các biến thể đều khác biệt đáng kể so với nhóm đối chứng về khía cạnh này, với giá trị cao nhất thuộc về benzyladenine ở nồng độ 100 và 200 mg/l và hỗn hợp axit gibberellic + benzyladenine ở nồng độ 200 mg/l (Hình 2).
Ảnh hưởng của axit gibberellic và benzyladenine đến tỷ lệ carbohydrate hòa tan và đường khử trong cây schefflera lùn. (GA3: axit gibberellic và BA: benzyladenine). Các chữ cái giống nhau trong mỗi hình biểu thị không có sự khác biệt đáng kể (P < 0,01).
Phân tích hồi quy từng bước được thực hiện để xác định các thuộc tính thực tế và hiểu rõ hơn mối quan hệ giữa các biến độc lập và số lượng lá ở Liriodendron tulipifera. Thể tích rễ là biến đầu tiên được đưa vào mô hình, giải thích 44% sự biến thiên. Biến tiếp theo là trọng lượng rễ tươi, và hai biến này giải thích 63% sự biến thiên về số lượng lá (Bảng 5).
Phân tích đường dẫn được thực hiện để hiểu rõ hơn về hồi quy từng bước (Bảng 6 và Hình 3). Tác động tích cực lớn nhất đến số lá liên quan đến khối lượng rễ tươi (0,43), có tương quan dương với số lá (0,47). Điều này cho thấy đặc điểm này ảnh hưởng trực tiếp đến năng suất, trong khi tác động gián tiếp thông qua các đặc điểm khác là không đáng kể, và đặc điểm này có thể được sử dụng làm tiêu chí chọn lọc trong các chương trình lai tạo giống Schefflera lùn. Tác động trực tiếp của thể tích rễ là âm (−0,67). Ảnh hưởng của đặc điểm này đến số lá là trực tiếp, ảnh hưởng gián tiếp là không đáng kể. Điều này cho thấy thể tích rễ càng lớn thì số lá càng ít.
Hình 4 thể hiện sự thay đổi trong hồi quy tuyến tính của thể tích rễ và đường khử. Theo hệ số hồi quy, mỗi đơn vị thay đổi về chiều dài rễ và carbohydrate hòa tan tương ứng với sự thay đổi lần lượt là 0,6019 và 0,311 đơn vị.
Hệ số tương quan Pearson của các đặc điểm sinh trưởng được thể hiện trong Hình 5. Kết quả cho thấy số lượng lá và chiều cao cây (0,379*) có hệ số tương quan dương và ý nghĩa thống kê cao nhất.
Biểu đồ nhiệt thể hiện mối quan hệ giữa các biến số trong hệ số tương quan tốc độ tăng trưởng. # Trục Y: 1-Chỉ số Ch., 2-Chiều dài lóng, 3-LAI, 4-Số lượng lá, 5-Chiều cao thân, 6-Đường kính thân. # Trục X: A – Chỉ số H, B – Khoảng cách giữa các lóng, C – LAI, D – Số lượng lá, E – Chiều cao thân, F – Đường kính thân.
Hệ số tương quan Pearson cho các thuộc tính liên quan đến trọng lượng tươi được thể hiện trong Hình 6. Kết quả cho thấy mối quan hệ giữa trọng lượng tươi của lá và trọng lượng khô trên mặt đất (0,834**), tổng trọng lượng khô (0,913**) và trọng lượng khô của rễ (0,562*). Tổng khối lượng khô có tương quan dương cao nhất và có ý nghĩa nhất với khối lượng khô của thân cây (0,790**) và khối lượng khô của rễ (0,741**).
Biểu đồ nhiệt thể hiện mối quan hệ giữa các biến hệ số tương quan trọng lượng tươi. # Trục Y: 1 – trọng lượng lá tươi, 2 – trọng lượng chồi tươi, 3 – trọng lượng rễ tươi, 4 – tổng trọng lượng lá tươi. # Trục X: A – trọng lượng lá tươi, B – trọng lượng chồi tươi, CW – trọng lượng rễ tươi, D – tổng trọng lượng tươi.
Hệ số tương quan Pearson cho các thuộc tính liên quan đến trọng lượng khô được thể hiện trong Hình 7. Kết quả cho thấy trọng lượng khô của lá, trọng lượng khô của chồi (0,848**) và tổng trọng lượng khô (0,947**), trọng lượng khô của chồi (0,854**) và tổng khối lượng khô (0,781**) có giá trị cao nhất, tương quan dương và tương quan có ý nghĩa thống kê.
Biểu đồ nhiệt thể hiện mối quan hệ giữa các biến hệ số tương quan trọng lượng khô. # Trục Y biểu thị: 1-trọng lượng khô lá, 2-trọng lượng khô chồi, 3-trọng lượng khô rễ, 4-trọng lượng khô tổng cộng. # Trục X: A-trọng lượng khô lá, B-trọng lượng khô chồi, CW-trọng lượng khô rễ, D-trọng lượng khô tổng cộng.
Hệ số tương quan Pearson của các đặc tính sắc tố được thể hiện trong Hình 8. Kết quả cho thấy chlorophyll a và chlorophyll b (0,716**), tổng chlorophyll (0,968**) và tổng sắc tố (0,954**); chlorophyll b và tổng chlorophyll (0,868**) và tổng sắc tố (0,851**); tổng chlorophyll có tương quan dương và có ý nghĩa thống kê cao nhất với tổng sắc tố (0,984**).
Biểu đồ nhiệt thể hiện mối quan hệ giữa các biến hệ số tương quan diệp lục. # Trục Y: 1- Kênh a, 2- Kênh b, 3 – Tỷ lệ a/b, 4 – Tổng kênh, 5 – carotenoid, 6 – Hàm lượng sắc tố. # Trục X: A-Kênh a, B-Kênh b, C- Tỷ lệ a/b, D- Tổng hàm lượng kênh, E- carotenoid, F- Hàm lượng sắc tố.
Cây Schefflera lùn là một loại cây cảnh phổ biến trên toàn thế giới, và sự sinh trưởng và phát triển của nó đang nhận được nhiều sự quan tâm trong những ngày này. Việc sử dụng chất điều hòa sinh trưởng thực vật đã tạo ra những khác biệt đáng kể, với tất cả các phương pháp xử lý đều làm tăng chiều cao cây so với đối chứng. Mặc dù chiều cao cây thường được kiểm soát bằng gen, nhưng nghiên cứu cho thấy việc sử dụng chất điều hòa sinh trưởng thực vật có thể làm tăng hoặc giảm chiều cao cây. Chiều cao cây và số lá được xử lý bằng axit gibberellic + benzyladenine 200 mg/L đạt mức cao nhất, lần lượt là 109 cm và 38,25. Phù hợp với các nghiên cứu trước đây (SalehiSardoei et al.52) và Spathiphyllum23, sự gia tăng tương tự về chiều cao cây do xử lý bằng axit gibberellic đã được quan sát thấy ở cúc vạn thọ trồng trong chậu, albus alba21, hoa loa kèn22, trầm hương và lan ý.
Axit gibberellic (GA) đóng vai trò quan trọng trong nhiều quá trình sinh lý của thực vật. Chúng kích thích sự phân chia tế bào, sự kéo dài tế bào, sự kéo dài thân và tăng kích thước24. GA gây ra sự phân chia và kéo dài tế bào ở đỉnh chồi và mô phân sinh25. Sự thay đổi của lá cũng bao gồm giảm độ dày thân, kích thước lá nhỏ hơn và màu xanh tươi hơn26. Các nghiên cứu sử dụng các yếu tố ức chế hoặc kích thích đã chỉ ra rằng các ion canxi từ nguồn nội sinh hoạt động như chất truyền tin thứ cấp trong con đường truyền tín hiệu gibberellin ở tràng hoa lúa miến27. HA làm tăng chiều dài cây bằng cách kích thích tổng hợp các enzyme gây giãn thành tế bào, chẳng hạn như XET hoặc XTH, expansin và PME28. Điều này làm cho các tế bào giãn nở khi thành tế bào giãn ra và nước đi vào tế bào29. Việc bón GA7, GA3 và GA4 có thể làm tăng sự kéo dài thân30,31. Axit gibberellic gây ra sự kéo dài thân ở cây lùn, và ở cây thân hoa thị, GA làm chậm sự phát triển của lá và sự kéo dài lóng thân32. Tuy nhiên, trước giai đoạn sinh sản, chiều dài thân tăng lên gấp 4-5 lần chiều cao ban đầu33. Quá trình tổng hợp GA ở thực vật được tóm tắt trong Hình 9.
Quá trình sinh tổng hợp GA trong thực vật và nồng độ GA hoạt tính sinh học nội sinh, sơ đồ minh họa thực vật (bên phải) và quá trình sinh tổng hợp GA (bên trái). Các mũi tên được mã hóa màu sắc tương ứng với dạng HA được chỉ ra dọc theo con đường sinh tổng hợp; mũi tên màu đỏ biểu thị mức GC giảm do sự định vị trong các cơ quan thực vật, và mũi tên màu đen biểu thị mức GC tăng. Ở nhiều loại thực vật, chẳng hạn như lúa và dưa hấu, hàm lượng GA cao hơn ở gốc hoặc phần dưới của lá30. Hơn nữa, một số báo cáo chỉ ra rằng hàm lượng GA hoạt tính sinh học giảm khi lá dài ra từ gốc34. Nồng độ gibberellin chính xác trong những trường hợp này vẫn chưa được biết.
Các chất điều hòa sinh trưởng thực vật cũng ảnh hưởng đáng kể đến số lượng và diện tích lá. Kết quả cho thấy việc tăng nồng độ chất điều hòa sinh trưởng thực vật dẫn đến sự gia tăng đáng kể về diện tích và số lượng lá. Benzyladenine đã được báo cáo là làm tăng sản lượng lá của cây hoa loa kèn15. Theo kết quả nghiên cứu này, tất cả các phương pháp xử lý đều cải thiện diện tích và số lượng lá. Sự kết hợp giữa axit gibberellic + benzyladenine là phương pháp xử lý hiệu quả nhất và cho kết quả số lượng và diện tích lá lớn nhất. Khi trồng cây hoa loa kèn lùn trong nhà, có thể thấy sự gia tăng đáng kể về số lượng lá.
Xử lý bằng GA3 làm tăng chiều dài lóng thân so với benzyladenine (BA) hoặc không xử lý hormone. Kết quả này là hợp lý vì vai trò của GA trong việc thúc đẩy tăng trưởng7. Sự phát triển của thân cây cũng cho thấy kết quả tương tự. Axit gibberellic làm tăng chiều dài thân cây nhưng làm giảm đường kính của nó. Tuy nhiên, việc kết hợp sử dụng BA và GA3 làm tăng đáng kể chiều dài thân cây. Mức tăng này cao hơn so với cây được xử lý bằng BA hoặc không sử dụng hormone. Mặc dù axit gibberellic và cytokinin (CK) nói chung thúc đẩy sự phát triển của cây, nhưng trong một số trường hợp, chúng lại có tác dụng ngược nhau đối với các quá trình khác nhau35. Ví dụ, một tương tác tiêu cực đã được quan sát thấy trong sự gia tăng chiều dài trụ mầm ở cây được xử lý bằng GA và BA36. Mặt khác, BA làm tăng đáng kể thể tích rễ (Bảng 1). Sự gia tăng thể tích rễ do BA ngoại sinh đã được báo cáo ở nhiều loại cây (ví dụ như các loài Dendrobium và Lan)37,38.
Tất cả các phương pháp xử lý hormone đều làm tăng số lượng lá mới. Sự gia tăng tự nhiên về diện tích lá và chiều dài thân cây thông qua các phương pháp xử lý kết hợp là điều mong muốn về mặt thương mại. Số lượng lá mới là một chỉ số quan trọng của sự sinh trưởng thực vật. Việc sử dụng hormone ngoại sinh chưa được áp dụng trong sản xuất thương mại Liriodendron tulipifera. Tuy nhiên, tác dụng thúc đẩy sinh trưởng của GA và CK, khi được áp dụng cân bằng, có thể cung cấp những hiểu biết mới để cải thiện việc trồng loại cây này. Đáng chú ý, hiệu quả hiệp đồng của phương pháp xử lý BA + GA3 cao hơn so với GA hoặc BA được sử dụng riêng lẻ. Axit gibberellic làm tăng số lượng lá mới. Khi lá mới phát triển, việc tăng số lượng lá mới có thể hạn chế sự phát triển của lá39. GA được báo cáo là cải thiện sự vận chuyển sucrose từ các cơ quan tiêu thụ đến các cơ quan cung cấp40,41. Ngoài ra, việc bón GA ngoại sinh cho cây lâu năm có thể thúc đẩy sự phát triển của các cơ quan sinh dưỡng như lá và rễ, do đó ngăn chặn sự chuyển đổi từ sinh trưởng thực vật sang sinh trưởng sinh sản42.
Tác dụng của GA trong việc tăng khối lượng chất khô của cây có thể được giải thích bằng sự gia tăng quang hợp do tăng diện tích lá43. GA được báo cáo là gây ra sự gia tăng diện tích lá của cây ngô34. Kết quả cho thấy việc tăng nồng độ BA lên 200 mg/L có thể làm tăng chiều dài và số lượng cành phụ cũng như thể tích rễ. Axit gibberellic ảnh hưởng đến các quá trình tế bào như kích thích sự phân chia và kéo dài tế bào, do đó cải thiện sự sinh trưởng thực vật43. Ngoài ra, HA làm giãn nở thành tế bào bằng cách thủy phân tinh bột thành đường, do đó làm giảm thế năng nước của tế bào, khiến nước đi vào tế bào và cuối cùng dẫn đến sự kéo dài tế bào44.
Thời gian đăng bài: 08/05/2024