Cảm ơn bạn đã ghé thăm Nature.com. Phiên bản trình duyệt bạn đang sử dụng có hỗ trợ CSS hạn chế. Để có kết quả tốt nhất, chúng tôi khuyên bạn nên sử dụng phiên bản trình duyệt mới hơn (hoặc tắt chế độ tương thích trong Internet Explorer). Trong thời gian chờ đợi, để đảm bảo hỗ trợ liên tục, chúng tôi sẽ hiển thị trang web mà không sử dụng kiểu dáng hoặc JavaScript.
Cây cảnh lá xanh tươi được đánh giá rất cao. Một cách để đạt được điều này là sử dụng các chất điều hòa sinh trưởng thực vật như một công cụ quản lý sinh trưởng thực vật. Nghiên cứu được tiến hành trên cây lùn Schefflera (một loại cây cảnh lá xanh) được xử lý bằng cách phun axit gibberellic và hormone benzyladenine lên lá trong nhà kính được trang bị hệ thống tưới phun sương. Hormone được phun lên lá của cây lùn Schefflera ở nồng độ 0, 100 và 200 mg/lít trong ba giai đoạn cứ sau 15 ngày. Thí nghiệm được tiến hành theo phương pháp nhân tố trong thiết kế hoàn toàn ngẫu nhiên với bốn lần lặp lại. Sự kết hợp axit gibberellic và benzyladenine ở nồng độ 200 mg/lít có tác động đáng kể đến số lượng lá, diện tích lá và chiều cao cây. Xử lý này cũng dẫn đến hàm lượng sắc tố quang hợp cao nhất. Ngoài ra, tỷ lệ carbohydrate hòa tan và đường khử cao nhất được quan sát thấy ở các xử lý benzyladenine 100 và 200 mg/L và gibberellin + benzyladenine 200 mg/L. Phân tích hồi quy từng bước cho thấy thể tích rễ là biến đầu tiên được đưa vào mô hình, giải thích 44% sự biến thiên. Biến tiếp theo là khối lượng rễ tươi, với mô hình hai biến giải thích 63% sự biến thiên của số lá. Tác động tích cực lớn nhất đến số lá là khối lượng rễ tươi (0,43), có tương quan thuận với số lá (0,47). Kết quả cho thấy axit gibberellic và benzyladenine ở nồng độ 200 mg/l đã cải thiện đáng kể sự sinh trưởng hình thái, tổng hợp diệp lục và carotenoid của Liriodendron tulipifera, đồng thời làm giảm hàm lượng đường và carbohydrate hòa tan.
Schefflera arborescens (Hayata) Merr là một loại cây cảnh thường xanh thuộc họ Cuồng cuồng, có nguồn gốc từ Trung Quốc và Đài Loan1. Loại cây này thường được trồng làm cây cảnh trong nhà, nhưng chỉ có một cây có thể phát triển trong điều kiện như vậy. Lá có từ 5 đến 16 lá chét, mỗi lá dài 10-20 cm2. Schefflera lùn được bán với số lượng lớn hàng năm, nhưng các phương pháp làm vườn hiện đại hiếm khi được sử dụng. Do đó, việc sử dụng các chất điều hòa sinh trưởng thực vật như một công cụ quản lý hiệu quả để cải thiện sinh trưởng và sản xuất bền vững các sản phẩm làm vườn cần được quan tâm nhiều hơn. Ngày nay, việc sử dụng các chất điều hòa sinh trưởng thực vật đã tăng lên đáng kể3,4,5. Axit Gibberellic là một chất điều hòa sinh trưởng thực vật có thể làm tăng năng suất cây trồng6. Một trong những tác dụng đã biết của nó là kích thích sinh trưởng sinh dưỡng, bao gồm kéo dài thân và rễ và tăng diện tích lá7. Tác dụng quan trọng nhất của gibberellin là làm tăng chiều cao thân do các lóng dài ra. Phun gibberellin lên lá cây lùn không thể sản xuất gibberellin sẽ làm tăng chiều cao thân và chiều dài cây8. Phun axit gibberellic lên hoa và lá ở nồng độ 500 mg/l có thể làm tăng chiều cao, số lượng, chiều rộng và chiều dài lá9. Gibberellin đã được báo cáo là có tác dụng kích thích sinh trưởng của nhiều loại cây lá rộng10. Sự kéo dài thân đã được quan sát thấy ở thông Scots (Pinussylvestris) và vân sam trắng (Piceaglauca) khi lá được phun axit gibberellic11.
Một nghiên cứu đã kiểm tra tác động của ba chất điều hòa sinh trưởng thực vật cytokinin lên sự hình thành nhánh bên ở Lily officinalis. Các thí nghiệm được tiến hành vào mùa thu và mùa xuân để nghiên cứu tác động theo mùa. Kết quả cho thấy kinetin, benzyladenine và 2-prenyladenine không ảnh hưởng đến sự hình thành các nhánh bổ sung. Tuy nhiên, 500 ppm benzyladenine dẫn đến sự hình thành 12,2 và 8,2 nhánh phụ trong các thí nghiệm vào mùa thu và mùa xuân, tương ứng, so với 4,9 và 3,9 nhánh ở cây đối chứng. Các nghiên cứu đã chỉ ra rằng các phương pháp xử lý vào mùa hè hiệu quả hơn các phương pháp xử lý vào mùa đông12. Trong một thí nghiệm khác, cây Peace Lily var. Tassone được xử lý bằng 0, 250 và 500 ppm benzyladenine trong các chậu có đường kính 10 cm. Kết quả cho thấy rằng xử lý đất làm tăng đáng kể số lượng lá bổ sung so với cây đối chứng và cây được xử lý bằng benzyladenine. Các lá bổ sung mới được quan sát thấy bốn tuần sau khi xử lý và sản lượng lá tối đa được quan sát thấy tám tuần sau khi xử lý. Vào tuần thứ 20 sau khi xử lý, cây được xử lý đất tăng chiều cao ít hơn so với cây được xử lý trước đó13. Có báo cáo rằng benzyladenine ở nồng độ 20 mg/L có thể làm tăng đáng kể chiều cao cây và số lượng lá ở Croton 14. Ở hoa loa kèn, benzyladenine ở nồng độ 500 ppm dẫn đến sự gia tăng số lượng cành, trong khi số lượng cành là ít nhất ở nhóm đối chứng15. Mục đích của nghiên cứu này là tìm hiểu việc phun axit gibberellic và benzyladenine lên lá để cải thiện sự phát triển của Schefflera dwarfa, một loại cây cảnh làm lá. Các chất điều hòa sinh trưởng thực vật này có thể giúp những người trồng thương mại lập kế hoạch sản xuất phù hợp quanh năm. Chưa có nghiên cứu nào được tiến hành để cải thiện sự phát triển của Liriodendron tulipifera.
Nghiên cứu này được thực hiện tại nhà kính nghiên cứu cây trồng trong nhà của Đại học Hồi giáo Azad ở Jiloft, Iran. Các gốc ghép lùn Schefflera đồng đều, cao 25±5 cm (được nhân giống sáu tháng trước khi thí nghiệm) đã được chuẩn bị và gieo vào chậu. Chậu nhựa, màu đen, đường kính 20 cm và cao 30 cm16.
Môi trường nuôi cấy trong nghiên cứu này là hỗn hợp than bùn, mùn, cát rửa sạch và trấu theo tỷ lệ 1:1:1:1 (theo thể tích)16. Đặt một lớp sỏi dưới đáy chậu để thoát nước. Nhiệt độ trung bình ban ngày và ban đêm trong nhà kính vào cuối mùa xuân và mùa hè lần lượt là 32 ± 2 ° C và 28 ± 2 ° C. Độ ẩm tương đối dao động đến > 70%. Sử dụng hệ thống phun sương để tưới tiêu. Trung bình, cây được tưới 12 lần một ngày. Vào mùa thu và mùa hè, thời gian mỗi lần tưới là 8 phút và khoảng cách giữa các lần tưới là 1 giờ. Cây được trồng tương tự bốn lần, 2, 4, 6 và 8 tuần sau khi gieo, với dung dịch vi lượng (Công ty Ghoncheh, Iran) ở nồng độ 3 ppm và tưới 100 ml dung dịch mỗi lần. Dung dịch dinh dưỡng chứa N 8 ppm, P 4 ppm, K 5 ppm và các nguyên tố vi lượng Fe, Pb, Zn, Mn, Mo và B.
Ba nồng độ axit gibberellic và chất điều hòa sinh trưởng thực vật benzyladenine (mua từ Sigma) đã được chuẩn bị ở nồng độ 0, 100 và 200 mg/L và phun lên chồi cây theo ba giai đoạn, cách nhau 15 ngày17. Tween 20 (0,1%) (mua từ Sigma) được sử dụng trong dung dịch để tăng tuổi thọ và tốc độ hấp thụ. Vào sáng sớm, phun hormone lên chồi và lá của Liriodendron tulipifera bằng bình phun. Cây được phun nước cất.
Chiều cao cây, đường kính thân, diện tích lá, hàm lượng diệp lục, số đốt, chiều dài cành thứ cấp, số cành thứ cấp, thể tích rễ, chiều dài rễ, khối lượng lá, rễ, thân và chất khô tươi, hàm lượng sắc tố quang hợp (diệp lục a, diệp lục b), tổng diệp lục, carotenoid, tổng sắc tố), đường khử và carbohydrate hòa tan được đo trong các phương pháp xử lý khác nhau.
Hàm lượng diệp lục của lá non được đo 180 ngày sau khi phun bằng máy đo diệp lục (Spad CL-01) từ 9:30 đến 10 giờ sáng (do lá còn tươi). Ngoài ra, diện tích lá được đo 180 ngày sau khi phun. Cân ba lá từ ngọn, giữa và gốc thân từ mỗi chậu. Những chiếc lá này sau đó được sử dụng làm mẫu trên giấy A4 và mẫu thu được được cắt ra. Trọng lượng và diện tích bề mặt của một tờ giấy A4 cũng được đo. Sau đó, diện tích của những chiếc lá được in khuôn được tính bằng cách sử dụng các tỷ lệ. Ngoài ra, thể tích của rễ được xác định bằng xi lanh chia độ. Trọng lượng khô của lá, trọng lượng khô của thân, trọng lượng khô của rễ và tổng trọng lượng khô của mỗi mẫu được đo bằng cách sấy trong lò ở 72°C trong 48 giờ.
Hàm lượng diệp lục và carotenoid được đo bằng phương pháp Lichtenthaler18. Để thực hiện, 0,1 g lá tươi được nghiền trong cối sứ có chứa 15 ml axeton 80%, sau khi lọc, mật độ quang của lá được đo bằng máy quang phổ ở các bước sóng 663,2, 646,8 và 470 nm. Hiệu chuẩn thiết bị bằng axeton 80%. Tính nồng độ sắc tố quang hợp theo phương trình sau:
Trong đó, Chl a, Chl b, Chl T và Car lần lượt biểu thị hàm lượng diệp lục a, diệp lục b, diệp lục tổng số và carotenoid. Kết quả được trình bày theo mg/ml.
Đường khử được đo bằng phương pháp Somogy19. Để thực hiện phương pháp này, nghiền 0,02 g chồi cây trong cối sứ với 10 ml nước cất và đổ vào một cốc thủy tinh nhỏ. Đun sôi cốc rồi lọc nội dung của nó bằng giấy lọc Whatman số 1 để thu được dịch chiết thực vật. Chuyển 2 ml của mỗi dịch chiết vào ống nghiệm và thêm 2 ml dung dịch đồng sunfat. Đậy ống nghiệm bằng bông gòn và đun trong nồi cách thủy ở 100°C trong 20 phút. Ở giai đoạn này, Cu2+ được chuyển thành Cu2O bằng cách khử monosacarit anđehit và có thể nhìn thấy màu cá hồi (màu đất nung) ở đáy ống nghiệm. Sau khi ống nghiệm nguội, thêm 2 ml axit phosphomolybdic và sẽ xuất hiện màu xanh lam. Lắc mạnh ống nghiệm cho đến khi màu phân bố đều khắp ống. Đọc độ hấp thụ của dung dịch ở bước sóng 600 nm bằng máy quang phổ.
Tính nồng độ đường khử bằng đường chuẩn. Nồng độ carbohydrate hòa tan được xác định bằng phương pháp Fales20. Để thực hiện, 0,1 g giá đỗ được trộn với 2,5 ml etanol 80% ở 90 °C trong 60 phút (hai giai đoạn, mỗi giai đoạn 30 phút) để chiết carbohydrate hòa tan. Sau đó, dịch chiết được lọc và cồn được bốc hơi. Kết tủa thu được được hòa tan trong 2,5 ml nước cất. Đổ 200 ml mỗi mẫu vào ống nghiệm và thêm 5 ml chỉ thị anthrone. Đặt hỗn hợp vào bồn nước ở 90 °C trong 17 phút, và sau khi làm nguội, độ hấp thụ của hỗn hợp được xác định ở bước sóng 625 nm.
Thí nghiệm là một thí nghiệm nhân tố dựa trên thiết kế hoàn toàn ngẫu nhiên với bốn lần lặp lại. Quy trình PROC UNIVARIATE được sử dụng để kiểm tra tính chuẩn của phân phối dữ liệu trước khi phân tích phương sai. Phân tích thống kê bắt đầu bằng phân tích thống kê mô tả để hiểu chất lượng của dữ liệu thô được thu thập. Các phép tính được thiết kế để đơn giản hóa và nén các tập dữ liệu lớn để giúp chúng dễ diễn giải hơn. Các phân tích phức tạp hơn sau đó đã được thực hiện. Kiểm định Duncan được thực hiện bằng phần mềm SPSS (phiên bản 24; IBM Corporation, Armonk, NY, Hoa Kỳ) để tính toán bình phương trung bình và sai số thực nghiệm để xác định sự khác biệt giữa các tập dữ liệu. Kiểm định bội số Duncan (DMRT) được sử dụng để xác định sự khác biệt giữa các giá trị trung bình ở mức ý nghĩa (0,05 ≤ p). Hệ số tương quan Pearson (r) được tính bằng phần mềm SPSS (phiên bản 26; IBM Corp., Armonk, NY, Hoa Kỳ) để đánh giá mối tương quan giữa các cặp tham số khác nhau. Ngoài ra, phân tích hồi quy tuyến tính được thực hiện bằng phần mềm SPSS (phiên bản 26) để dự đoán giá trị của các biến năm thứ nhất dựa trên giá trị của các biến năm thứ hai. Mặt khác, phân tích hồi quy từng bước với p < 0,01 đã được thực hiện để xác định các đặc điểm ảnh hưởng quan trọng đến lá cây Schefflera lùn. Phân tích đường dẫn đã được thực hiện để xác định tác động trực tiếp và gián tiếp của từng thuộc tính trong mô hình (dựa trên các đặc điểm giải thích rõ hơn sự biến thiên). Tất cả các phép tính trên (phân phối chuẩn, hệ số tương quan đơn, hồi quy từng bước và phân tích đường dẫn) đã được thực hiện bằng phần mềm SPSS V.26.
Các mẫu cây trồng được lựa chọn tuân thủ theo các hướng dẫn có liên quan của tổ chức, quốc gia và quốc tế cũng như luật pháp trong nước của Iran.
Bảng 1 cho thấy thống kê mô tả về giá trị trung bình, độ lệch chuẩn, giá trị tối thiểu, giá trị tối đa, phạm vi và hệ số biến thiên kiểu hình (CV) cho các tính trạng khác nhau. Trong số các thống kê này, CV cho phép so sánh các thuộc tính vì nó không có đơn vị. Đường khử (40,39%), trọng lượng rễ khô (37,32%), trọng lượng rễ tươi (37,30%), tỷ lệ đường/đường (30,20%) và thể tích rễ (30%) là cao nhất. và hàm lượng diệp lục (9,88%) và diện tích lá có chỉ số cao nhất (11,77%) và có giá trị CV thấp nhất. Bảng 1 cho thấy tổng trọng lượng ướt có phạm vi cao nhất. Tuy nhiên, tính trạng này không có CV cao nhất. Do đó, nên sử dụng các số liệu không có đơn vị như CV để so sánh những thay đổi thuộc tính. CV cao cho thấy sự khác biệt lớn giữa các nghiệm thức đối với tính trạng này. Kết quả của thí nghiệm này cho thấy sự khác biệt lớn giữa các nghiệm thức có lượng đường thấp về trọng lượng rễ khô, trọng lượng rễ tươi, tỷ lệ carbohydrate/đường và các đặc điểm thể tích rễ.
Kết quả phân tích phương sai cho thấy, so với đối chứng, phun axit gibberellic và benzyladenine lên lá có ảnh hưởng đáng kể đến chiều cao cây, số lá, diện tích lá, thể tích rễ, chiều dài rễ, chỉ số diệp lục, trọng lượng tươi và trọng lượng khô.
So sánh giá trị trung bình cho thấy chất điều hòa sinh trưởng thực vật có ảnh hưởng đáng kể đến chiều cao cây và số lá. Các nghiệm thức có hiệu quả nhất là axit gibberellic ở nồng độ 200 mg/l và axit gibberellic + benzyladenine ở nồng độ 200 mg/l. So với đối chứng, chiều cao cây và số lá tăng lần lượt 32,92 lần và 62,76 lần (Bảng 2).
Diện tích lá tăng đáng kể ở tất cả các nghiệm thức so với nghiệm thức đối chứng, với mức tăng tối đa được ghi nhận ở nồng độ axit gibberellic 200 mg/l, đạt 89,19 cm2. Kết quả cho thấy diện tích lá tăng đáng kể khi tăng nồng độ chất điều hòa sinh trưởng (Bảng 2).
Tất cả các nghiệm thức đều làm tăng đáng kể thể tích và chiều dài rễ so với nghiệm thức đối chứng. Sự kết hợp axit gibberellic + benzyladenine có hiệu quả lớn nhất, làm tăng thể tích và chiều dài rễ lên một nửa so với nghiệm thức đối chứng (Bảng 2).
Giá trị đường kính thân và chiều dài lóng cao nhất được quan sát thấy ở nghiệm thức đối chứng và nghiệm thức bổ sung axit gibberellic + benzyladenine 200 mg/l.
Chỉ số diệp lục tăng ở tất cả các biến thể so với đối chứng. Giá trị cao nhất của đặc điểm này được ghi nhận khi xử lý bằng axit gibberellic + benzyladenine 200 mg/l, cao hơn 30,21% so với đối chứng (Bảng 2).
Kết quả cho thấy phương pháp xử lý đã tạo ra sự khác biệt đáng kể về hàm lượng sắc tố, giảm lượng đường và carbohydrate hòa tan.
Xử lý bằng axit gibberellic + benzyladenine cho hàm lượng sắc tố quang hợp tối đa. Dấu hiệu này cao hơn đáng kể ở tất cả các biến thể so với đối chứng.
Kết quả cho thấy tất cả các nghiệm thức đều có thể làm tăng hàm lượng diệp lục của lúa Schefflera lùn. Tuy nhiên, giá trị cao nhất của đặc điểm này được ghi nhận ở nghiệm thức axit gibberellic + benzyladenine, cao hơn 36,95% so với nghiệm thức đối chứng (Bảng 3).
Kết quả đối với diệp lục b hoàn toàn tương tự với kết quả đối với diệp lục a, điểm khác biệt duy nhất là hàm lượng diệp lục b tăng cao hơn đối chứng 67,15% (Bảng 3).
Kết quả xử lý cho thấy hàm lượng diệp lục tổng số tăng đáng kể so với đối chứng. Xử lý bằng axit gibberellic 200 mg/l + benzyladenine 100 mg/l cho giá trị đặc điểm này cao nhất, cao hơn 50% so với đối chứng (Bảng 3). Theo kết quả, đối chứng và xử lý bằng benzyladenine ở liều 100 mg/l cho tỷ lệ đặc điểm này cao nhất. Liriodendron tulipifera có giá trị carotenoid cao nhất (Bảng 3).
Kết quả cho thấy khi xử lý bằng axit gibberellic ở nồng độ 200 mg/L, hàm lượng diệp lục a tăng đáng kể so với diệp lục b (Hình 1).
Ảnh hưởng của axit gibberellic và benzyladenine lên tỷ lệ a/b Ch. Tỷ lệ cây schefflera lùn. (GA3: axit gibberellic và BA: benzyladenine). Các chữ cái giống nhau trong mỗi hình biểu thị không có sự khác biệt đáng kể (P < 0,01).
Hiệu quả của từng nghiệm thức lên trọng lượng tươi và khô của gỗ cây schefflera lùn cao hơn đáng kể so với nghiệm thức đối chứng. Axit gibberellic + benzyladenine ở liều 200 mg/l là nghiệm thức hiệu quả nhất, làm tăng trọng lượng tươi 138,45% so với nghiệm thức đối chứng. So với nghiệm thức đối chứng, tất cả các nghiệm thức, ngoại trừ benzyladenine 100 mg/l, đều làm tăng đáng kể trọng lượng khô của cây, và nghiệm thức axit gibberellic + benzyladenine 200 mg/l cho kết quả cao nhất về đặc điểm này (Bảng 4).
Hầu hết các biến thể khác biệt đáng kể so với đối chứng về mặt này, với các giá trị cao nhất thuộc về 100 và 200 mg/l benzyladenine và 200 mg/l axit gibberellic + benzyladenine (Hình 2).
Ảnh hưởng của axit gibberellic và benzyladenine lên tỷ lệ carbohydrate hòa tan và đường khử trong giống nho lùn Schefflera. (GA3: axit gibberellic và BA: benzyladenine). Các chữ cái giống nhau trong mỗi hình biểu thị không có sự khác biệt đáng kể (P < 0,01).
Phân tích hồi quy từng bước được thực hiện để xác định các thuộc tính thực tế và hiểu rõ hơn mối quan hệ giữa các biến độc lập và số lá ở Liriodendron tulipifera. Thể tích rễ là biến đầu tiên được đưa vào mô hình, giải thích được 44% biến thiên. Biến tiếp theo là trọng lượng rễ tươi, và hai biến này giải thích được 63% biến thiên về số lá (Bảng 5).
Phân tích đường dẫn đã được thực hiện để diễn giải tốt hơn hồi quy từng bước (Bảng 6 và Hình 3). Tác động tích cực lớn nhất đến số lượng lá có liên quan đến khối lượng rễ tươi (0,43), tương quan thuận với số lượng lá (0,47). Điều này cho thấy tính trạng này ảnh hưởng trực tiếp đến năng suất, trong khi tác động gián tiếp của nó thông qua các tính trạng khác là không đáng kể, và tính trạng này có thể được sử dụng làm tiêu chí chọn lọc trong các chương trình nhân giống lúa lùn schefflera. Tác động trực tiếp của thể tích rễ là âm (-0,67). Ảnh hưởng của tính trạng này đến số lượng lá là trực tiếp, còn tác động gián tiếp là không đáng kể. Điều này cho thấy thể tích rễ càng lớn thì số lượng lá càng ít.
Hình 4 cho thấy sự thay đổi trong hồi quy tuyến tính của thể tích rễ và lượng đường khử. Theo hệ số hồi quy, mỗi đơn vị thay đổi về chiều dài rễ và carbohydrate hòa tan có nghĩa là thể tích rễ và lượng đường khử thay đổi lần lượt là 0,6019 và 0,311 đơn vị.
Hệ số tương quan Pearson của các tính trạng sinh trưởng được thể hiện ở Hình 5. Kết quả cho thấy số lá và chiều cao cây (0,379*) có tương quan dương và có ý nghĩa thống kê cao nhất.
Bản đồ nhiệt về mối quan hệ giữa các biến trong hệ số tương quan tốc độ sinh trưởng. # Trục Y: 1-Chỉ số Ch., 2-Nốt, 3-LAI, 4-N của lá, 5-Chiều cao chân, 6-Đường kính thân. # Dọc theo trục X: A – Chỉ số H, B – khoảng cách giữa các đốt, C – LAI, D – N. của lá, E – chiều cao chân, F – đường kính thân.
Hệ số tương quan Pearson cho các thuộc tính liên quan đến trọng lượng ướt được thể hiện trong Hình 6. Kết quả cho thấy mối quan hệ giữa trọng lượng ướt của lá và trọng lượng khô trên mặt đất (0,834**), trọng lượng khô tổng thể (0,913**) và trọng lượng khô của rễ (0,562*). . Tổng trọng lượng khô có mối tương quan dương cao nhất và có ý nghĩa nhất với khối lượng khô của thân (0,790**) và khối lượng khô của rễ (0,741**).
Bản đồ nhiệt về mối quan hệ giữa các biến hệ số tương quan trọng lượng tươi. # Trục Y: 1 – trọng lượng lá tươi, 2 – trọng lượng chồi tươi, 3 – trọng lượng rễ tươi, 4 – tổng trọng lượng lá tươi. # Trục X: A – trọng lượng lá tươi, B – trọng lượng chồi tươi, CW – trọng lượng rễ tươi, D – tổng trọng lượng tươi.
Hệ số tương quan Pearson đối với các thuộc tính liên quan đến trọng lượng khô được thể hiện ở Hình 7. Kết quả cho thấy trọng lượng khô của lá, trọng lượng khô của nụ (0,848**) và trọng lượng khô tổng thể (0,947**), trọng lượng khô của nụ (0,854**) và trọng lượng khô tổng thể (0,781**) có giá trị cao nhất. tương quan thuận và tương quan có ý nghĩa.
Bản đồ nhiệt về mối quan hệ giữa các biến hệ số tương quan trọng lượng khô. # Trục Y biểu thị: trọng lượng khô 1 lá, trọng lượng khô 2 nụ, trọng lượng khô 3 rễ, trọng lượng khô tổng số 4. # Trục X: A-trọng lượng khô lá, B-trọng lượng khô nụ, trọng lượng khô rễ CW, D-trọng lượng khô tổng số.
Hệ số tương quan Pearson của các tính chất sắc tố được thể hiện ở Hình 8. Kết quả cho thấy diệp lục a và diệp lục b (0,716**), diệp lục tổng số (0,968**) và tổng số sắc tố (0,954**); diệp lục b và diệp lục tổng số (0,868**) và tổng số sắc tố (0,851**); diệp lục tổng số có tương quan dương và có ý nghĩa cao nhất với tổng số sắc tố (0,984**).
Bản đồ nhiệt biểu diễn mối quan hệ giữa các biến hệ số tương quan diệp lục. # Trục Y: 1- Kênh a, 2- Kênh. b,3 – tỷ lệ a/b, 4 kênh. Tổng, 5-carotenoid, 6-năng suất sắc tố. # Trục X: A-Ch. aB-Ch. b,C- tỷ lệ a/b, D-Ch. Tổng hàm lượng, E-carotenoid, F-năng suất sắc tố.
Schefflera lùn là một loại cây trồng trong nhà phổ biến trên toàn thế giới và sự sinh trưởng và phát triển của nó đang nhận được nhiều sự quan tâm hiện nay. Việc sử dụng chất điều hòa sinh trưởng thực vật đã dẫn đến những khác biệt đáng kể, với tất cả các phương pháp xử lý đều làm tăng chiều cao của cây so với đối chứng. Mặc dù chiều cao của cây thường được kiểm soát về mặt di truyền, nghiên cứu cho thấy việc sử dụng chất điều hòa sinh trưởng thực vật có thể làm tăng hoặc làm giảm chiều cao của cây. Chiều cao của cây và số lá được xử lý bằng axit gibberellic + benzyladenine 200 mg/L là cao nhất, lần lượt đạt 109 cm và 38,25 cm. Phù hợp với các nghiên cứu trước đây (SalehiSardoei và cộng sự.52) và Spathiphyllum23, sự gia tăng tương tự về chiều cao của cây do xử lý bằng axit gibberellic đã được quan sát thấy ở cây vạn thọ trồng trong chậu, albus alba21, hoa huệ nhật22, hoa huệ nhật, trầm hương và hoa loa kèn hòa bình.
Axit Gibberellic (GA) đóng vai trò quan trọng trong nhiều quá trình sinh lý của thực vật. Chúng kích thích sự phân chia tế bào, kéo dài tế bào, kéo dài thân và tăng kích thước24. GA thúc đẩy sự phân chia và kéo dài tế bào ở đỉnh chồi và mô phân sinh25. Những thay đổi của lá cũng bao gồm độ dày thân giảm, kích thước lá nhỏ hơn và màu xanh lục sáng hơn26. Các nghiên cứu sử dụng các yếu tố ức chế hoặc kích thích đã chỉ ra rằng các ion canxi từ các nguồn bên trong hoạt động như các chất truyền tin thứ hai trong con đường truyền tín hiệu gibberellin ở tràng hoa lúa miến27. HA làm tăng chiều dài cây bằng cách kích thích tổng hợp các enzyme gây giãn thành tế bào, chẳng hạn như XET hoặc XTH, expansin và PME28. Điều này khiến các tế bào mở rộng khi thành tế bào giãn ra và nước đi vào tế bào29. Việc sử dụng GA7, GA3 và GA4 có thể làm tăng sự kéo dài thân30,31. Axit Gibberellic gây ra sự kéo dài thân ở cây lùn, và ở cây hoa thị, GA làm chậm sự phát triển của lá và sự kéo dài lóng32. Tuy nhiên, trước giai đoạn sinh sản, chiều dài thân tăng gấp 4-5 lần chiều cao ban đầu33. Quá trình sinh tổng hợp GA ở thực vật được tóm tắt trong Hình 9.
Sinh tổng hợp GA ở thực vật và mức độ GA hoạt tính sinh học nội sinh, sơ đồ biểu diễn thực vật (phải) và sinh tổng hợp GA (trái). Các mũi tên được mã hóa màu tương ứng với dạng HA được chỉ ra dọc theo con đường sinh tổng hợp; mũi tên đỏ biểu thị mức GC giảm do tập trung ở các cơ quan thực vật, và mũi tên đen biểu thị mức GC tăng. Ở nhiều loại cây, chẳng hạn như lúa và dưa hấu, hàm lượng GA cao hơn ở gốc hoặc phần dưới của lá30. Hơn nữa, một số báo cáo chỉ ra rằng hàm lượng GA hoạt tính sinh học giảm khi lá dài ra từ gốc34. Nồng độ gibberellin chính xác trong những trường hợp này vẫn chưa được biết rõ.
Các chất điều hòa sinh trưởng thực vật cũng ảnh hưởng đáng kể đến số lượng và diện tích lá. Kết quả cho thấy việc tăng nồng độ chất điều hòa sinh trưởng thực vật dẫn đến sự gia tăng đáng kể diện tích và số lượng lá. Benzyladenine đã được báo cáo là làm tăng sản lượng lá calla15. Theo kết quả của nghiên cứu này, tất cả các nghiệm thức đều cải thiện diện tích và số lượng lá. Axit Gibberellic + benzyladenine là nghiệm thức hiệu quả nhất và cho số lượng và diện tích lá lớn nhất. Khi trồng cây schefflera lùn trong nhà, số lượng lá có thể tăng lên đáng kể.
Xử lý GA3 làm tăng chiều dài lóng so với benzyladenine (BA) hoặc không xử lý bằng hormone. Kết quả này là hợp lý khi xét đến vai trò của GA trong việc thúc đẩy sinh trưởng7. Sinh trưởng thân cũng cho kết quả tương tự. Axit gibberellic làm tăng chiều dài thân nhưng lại làm giảm đường kính. Tuy nhiên, việc kết hợp sử dụng BA và GA3 làm tăng đáng kể chiều dài thân. Mức tăng này cao hơn so với cây được xử lý bằng BA hoặc không có hormone. Mặc dù axit gibberellic và cytokinin (CK) thường thúc đẩy sinh trưởng của cây, nhưng trong một số trường hợp, chúng có tác dụng ngược lại đối với các quá trình khác nhau35. Ví dụ, người ta quan sát thấy tương tác tiêu cực trong việc tăng chiều dài hạ tử diệp ở cây được xử lý bằng GA và BA36. Mặt khác, BA làm tăng đáng kể thể tích rễ (Bảng 1). Thể tích rễ tăng do BA ngoại sinh đã được báo cáo ở nhiều loài thực vật (ví dụ như các loài Dendrobium và Orchid)37,38.
Tất cả các phương pháp xử lý bằng hormone đều làm tăng số lượng lá mới. Việc tăng tự nhiên diện tích lá và chiều dài thân cây thông qua các phương pháp xử lý kết hợp là mong muốn về mặt thương mại. Số lượng lá mới là một chỉ số quan trọng của sự sinh trưởng sinh dưỡng. Việc sử dụng hormone ngoại sinh chưa được sử dụng trong sản xuất thương mại Liriodendron tulipifera. Tuy nhiên, tác dụng thúc đẩy sinh trưởng của GA và CK, được áp dụng cân bằng, có thể cung cấp những hiểu biết mới về việc cải thiện việc trồng loại cây này. Đáng chú ý, tác dụng hiệp đồng của phương pháp xử lý BA + GA3 cao hơn so với GA hoặc BA được sử dụng riêng lẻ. Axit gibberellic làm tăng số lượng lá mới. Khi lá mới phát triển, việc tăng số lượng lá mới có thể hạn chế sự phát triển của lá39. GA đã được báo cáo là cải thiện việc vận chuyển sucrose từ các cơ quan chứa đến các cơ quan nguồn40,41. Ngoài ra, việc sử dụng GA ngoại sinh cho các cây lâu năm có thể thúc đẩy sự phát triển của các cơ quan sinh dưỡng như lá và rễ, do đó ngăn chặn sự chuyển đổi từ sinh trưởng sinh dưỡng sang sinh trưởng sinh sản42.
Tác dụng của GA đối với việc tăng vật chất khô của cây có thể được giải thích bằng sự gia tăng quang hợp do diện tích lá tăng43. GA được báo cáo là nguyên nhân làm tăng diện tích lá của ngô34. Kết quả cho thấy việc tăng nồng độ BA lên 200 mg/L có thể làm tăng chiều dài và số lượng nhánh thứ cấp cũng như thể tích rễ. Axit gibberellic ảnh hưởng đến các quá trình tế bào như kích thích phân chia và kéo dài tế bào, do đó cải thiện sinh trưởng sinh dưỡng43. Ngoài ra, HA mở rộng thành tế bào bằng cách thủy phân tinh bột thành đường, do đó làm giảm thế năng nước của tế bào, khiến nước đi vào tế bào và cuối cùng dẫn đến kéo dài tế bào44.
Thời gian đăng: 08-05-2024