Tương tác giữa gibberellin và kali nitrat, cũng như ảnh hưởng của nguồn phấn hoa đến các tính chất lý hóa của nho.

Đối với nho ăn quả, bao gồm cả giống cái Siah-e-Samarkhandi, hình thái chùm quả và kích thước quả rất quan trọng. Tuy nhiên, việc trồng giống nho này gặp phải một số thách thức, chẳng hạn như rụng quả và quả lùn, dẫn đến giảm năng suất và giá trị thị trường. Rụng quả là mối lo ngại lớn đối với giống Siah-e-Samarkhandi. Do đó, nghiên cứu này đã kiểm tra ảnh hưởng của GA₃ ở nồng độ 0, 30, 60 và 90 mg/L⁻¹ và HKO₃ ở nồng độ 0 và 1,5% đến quá trình thụ phấn của giống Siah-e-Samarkhandi trong điều kiện thụ phấn tự nhiên và có kiểm soát. Ngoài ra, một thí nghiệm khác đã đánh giá ảnh hưởng của các nguồn phấn hoa (các giống Siah-e-Shiraz, Askari, Rotabi, Rishbaba và Aatabaki) đến quá trình thụ phấn của giống Siah-e-Samarkhandi. Kết quả cho thấy, ngoại trừ giống Atabaki, phấn hoa từ các giống khác đã cải thiện cả năng suất quả và chùm quả ở giống Siah-e-Samarkhandi. Nhìn chung, sự kết hợp của 30 mg/Lgibberellin (GA₃)và 1,5% kali nitrat (KNO₃) có tác dụng kích thích đáng kể nhất đối với chất lượng và năng suất quả mọng và chùm quả.
Giống nho này đặc biệt quan trọng ở Iran và tỉnh Fars do độ tươi ngon và hàm lượng anthocyanin cao. Nho Siah-e-Samarkhandi phát triển trong điều kiện khí hậu khô hạn, với lượng mưa trung bình từ 300 đến 450 mm ở các vùng khác nhau trong tỉnh. Vì hình dáng chùm nho và kích thước quả rất quan trọng đối với độ tươi ngon, nên tồn tại một số vấn đề như kích thước quả không đồng đều, chất lượng chùm nho kém và số lượng quả trên mỗi chùm thấp (do rụng quả), làm giảm năng suất.³ Chiết xuất hạt nho ăn được có thể tạo ra nhiều tác dụng sinh học, bao gồm hoạt động như chất chống oxy hóa tự nhiên, chất bảo quản và chất khử trùng thực phẩm, do đó ngăn ngừa ô nhiễm thực phẩm bởi các vi sinh vật có hại.

Về khả năng tương thích giữa các giống nho, hầu hết các giống đều tự thụ phấn và thụ phấn chéo. Sự thụ tinh trong quần thể khép kín rất phổ biến ở nho. Mặc dù có những trường hợp ngoại lệ, nhưng chúng rất hiếm; một số giống không tự thụ phấn. Năng suất và chất lượng quả bị ảnh hưởng bởi nhiều yếu tố. Một trong những yếu tố cơ bản là sinh học sinh sản của giống nho. Sự phát triển đầy đủ của các cơ quan sinh sản và việc sản xuất phấn hoa phù hợp với tỷ lệ nảy mầm cao là rất cần thiết để đảm bảo khả năng sinh sản. Sự nảy mầm của phấn hoa phụ thuộc vào giống, điều kiện dinh dưỡng và các yếu tố môi trường, và điều kiện tối ưu cho sự nảy mầm của phấn hoa rất khác nhau.
Việc sử dụng gibberellin trong nho tươi không hạt có thể làm tăng kích thước quả trong giai đoạn đậu quả. 8.
Với năng suất trồng nho cao, việc tìm ra giải pháp phù hợp để nâng cao chất lượng là vô cùng quan trọng. Các phương pháp xử lý phấn hoa đã được thực hiện trên các giống nho như Siah-e-Shiraz và các giống khác, vì các phương pháp này tạo ra các hạt phấn có tỷ lệ nảy mầm cao (dữ liệu không được cung cấp). Việc đặt các hạt phấn này (hạt phấn khỏe mạnh là nguồn giàu auxin và GA3) lên vòi nhụy của giống nho Siah-e-Samarkhandi và sự nảy mầm của chúng sẽ kích thích sự phát triển của buồng trứng, dẫn đến sự tổng hợp nhiều hơn các hormone này và cuối cùng là hình thành quả. Sự hiện diện của các hạt phấn khỏe mạnh trong quả dẫn đến sự hình thành hạt khỏe mạnh (Hình 1A-F). Mục tiêu chính của thí nghiệm này là nghiên cứu nguyên nhân gây nứt quả nho và hiệu quả của các phương pháp xử lý như tương tác gibberellin (GA3) và kali nitrat (KNO3) cũng như thụ phấn chéo trong việc ngăn ngừa hoặc giảm thiểu vấn đề này ở giống nho Siah-e-Samarkhandi.
Thí nghiệm này được tiến hành trong hai năm (2021-2022) tại một vườn nho thương mại canh tác dựa vào nước mưa ở làng Khoral, phía tây bắc Shiraz, Iran (35 km về phía tây bắc Shiraz, 29°57′ N, 52°14′ S). Khu vực này có khí hậu ôn hòa, mát mẻ với lượng mưa trung bình hàng năm là 450 mm và đất sét pha cát. Cây nho được trồng cách nhau 3,5 mét trong hàng và 4 mét giữa các cây riêng lẻ. Vườn nho không được tưới tiêu (canh tác dựa vào nước mưa). Việc thu thập vật liệu thực vật tuân thủ các hướng dẫn và quy định có liên quan của tổ chức, quốc gia và quốc tế và được ủy quyền bởi một doanh nghiệp trồng trọt thương mại phối hợp với Đại học Shiraz.
Thí nghiệm thứ nhất và thứ hai sử dụng thiết kế giai thừa dựa trên thiết kế khối ngẫu nhiên và được lặp lại bốn lần.
Thí nghiệm thứ ba liên quan đến thụ phấn chéo (thụ phấn có kiểm soát) của giống Siah-e-Samarghandi bằng cách sử dụng phấn hoa từ năm giống khác (Rotabi, Rishbaba, Askari, Atabaki và Siah-e-Shiraz). Phấn hoa từ giống Siah-e-Samarghandi được sử dụng để tự thụ phấn cho giống này và đóng vai trò là đối chứng trong thí nghiệm này.
Trong suốt thời kỳ ra hoa của mỗi giống nho Siah-e-Samarghandi, phấn hoa từ các giống này được bôi lên bốn cụm hoa được chọn. Một đến ba ngày trước khi nở hoa, các cụm hoa được chọn được đặt trong túi giấy. Hai mươi lăm phần trăm số hoa của giống thụ phấn được đặt trong túi. Mười đến mười bốn ngày sau khi nở hoa, tất cả các túi giấy được lấy ra khỏi các cụm hoa.
Sau khi quả chín (hàm lượng chất rắn hòa tan ≥16%), năng suất nho được đo riêng lẻ. Tám chùm nho (bốn chùm được bọc, số còn lại không được bọc) sau đó được chọn ngẫu nhiên từ bốn phía của cây nho và chuyển đến phòng thí nghiệm sinh lý của Khoa Làm vườn, Khoa Nông nghiệp, Đại học Shiraz, Iran, để phân tích định lượng và định tính.
Tỷ lệ đậu quả được tính bằng công thức sau, bằng cách đếm số lượng hoa 10 ngày trước khi ra hoa và số lượng quả hình thành 10 ngày sau khi ra hoa.
Trong hai thí nghiệm đầu tiên, 10 quả mọng được chọn ngẫu nhiên từ mỗi chùm; trong thí nghiệm thứ ba, 50 quả mọng được chọn. Số lượng hạt trong mỗi quả mọng được đếm, và số lượng hạt trung bình trên mỗi quả mọng trong mỗi nhóm thí nghiệm được tính toán.
Để xác định các hợp chất phenolic, dịch chiết nước ép trái cây được pha loãng 1:1 với methanol 80%. Sau đó, 100 μl dịch chiết ethanol được trộn với 400 μl dung dịch đệm phosphat và 2,5 ml thuốc thử Folin-Ciocalteu (Sigma-Aldrich). Sau 1 phút, thêm 2 ml dung dịch natri cacbonat 7,5% vào hỗn hợp, và mẫu được ủ ở 25°C trong 5 phút. Sau đó, đo độ hấp thụ ở bước sóng 760 nm bằng máy quang phổ (BioTek Instruments, Inc., USA). Kết quả được biểu thị bằng miligam axit gallic trên 100 g trọng lượng tươi, với lượng axit gallic được sử dụng.^asmột tiêu chuẩn.
Hàm lượng anthocyanin được xác định bằng phương pháp pH khác nhau sử dụng hai dung dịch đệm khác nhau: dung dịch đệm KCl 25 mM ở pH 1,0 và dung dịch đệm natri axetat 0,4 M ở pH 4,5. Mỗi mẫu được ủ trong cả hai dung dịch đệm trong 15 phút, và độ hấp thụ được đo ở bước sóng 510 nm và 700 nm, với năm lần lặp lại cho mỗi mẫu. Tổng hàm lượng anthocyanin được xác định theo phương pháp của Sabir et al.
Hoạt tính chống oxy hóa^{đã được xác định}Sử dụng phương pháp 1,1-diphenyl-2-trinitrophenylhydrazine (DPPH). Phương pháp cụ thể như sau: 100 ml nước ép trái cây được pha loãng với methanol và nước theo tỷ lệ 1:100. Sau đó, dịch chiết được trộn với 2 ml dung dịch DPPH 0,1 mM trong methanol. Sau 30 phút, độ hấp thụ của dung dịch thu được được đo ở bước sóng 517 nm bằng máy quang phổ UV Cecil 2010. Độ hấp thụ gốc tự do của DPPH không có dịch chiết được sử dụng làm đối chứng. Hoạt tính chống oxy hóa được tính toán bằng công thức sau:
Thí nghiệm này sử dụng thiết kế hoàn toàn ngẫu nhiên, được lặp lại ba lần (mỗi lần lặp lại gồm bốn cụm). Dữ liệu được phân tích bằng phần mềm SAS 9.1, và phép thử Tukey được sử dụng để so sánh các giá trị trung bình ở mức ý nghĩa 0,05. Bản đồ nhiệt của các cụm được tạo bằng phần mềm R để phân tích đa biến.
So với nghiệm thức tự thụ phấn (14,97%), giá trị TSS đối với thụ phấn chéo trong nghiệm thức Atabaqui là 16,93%, đây là sự khác biệt đáng kể. Không có sự khác biệt đáng kể nào được quan sát thấy giữa các nghiệm thức khác và nghiệm thức tự thụ phấn (Hình 4B).
Hoạt tính chống oxy hóa cao nhất được quan sát thấy ở phương pháp tự thụ phấn (55,78%), trong khi thấp nhất là ở phương pháp sử dụng phấn hoa atabaca (18,88%) và askari (31,54%). Các phương pháp xử lý khác không khác biệt đáng kể so với nhóm đối chứng.